Текст книги "Респираторная медицина. Руководство (в 2-х томах)"
Автор книги: А. Чучалин
Жанр:
Медицина
сообщить о нарушении
Текущая страница: 17 (всего у книги 191 страниц)
Макроскопически на поверхности легких определяются плотные сероватобелые бугорки в виде зерен. Гистологически обнаруживают альвеолы, заполненные эозинофильным, гранулярным веществом, обычно ШИКположительным (рис. 4-38). Нередко в альвеолах встречаются вакуолизированные, пенистые макрофаги; на фоне эозинофильного вещества могут быть видны двоякопреломляющие кристаллы, вероятно, холестериновой природы. Характерна гиперплазия альвеолоцитов II типа, которые становятся кубоидальной формы. Как правило, архитектоника легочной ткани не изменена, однако в отдельных наблюдениях описанные изменения сопровождались интерстициальным фиброзом. Выраженные воспалительные изменения и наличие паренхиматозных очагов некроза свидетельствуют об инфекционном осложнении. Дифференциальную диагностику следует проводить с отеком легкого, при котором обнаруживают эозинофильное вещество, которое, в отличие от протеиноза гомогенное, не имеет гранулярной структуры, нехарактерно также наличие кристаллов и пенистых клеток. Следует также дифференцировать заболевание с пневмоцистной пневмонией, при этом выполнение окраски метамином серебра по Гомори позволяет выявить микроорганизмы [12].
path: pictures/0438.png
Рис. 4-38. Шикположительное вещество и кристаллы в альвеолах при альвеолярном протеинозе. ШИКреакция. Х200.
type: dkli00063
ВРОЖДЕННЫЕ (ГЕНЕТИЧЕСКИЕ) НАРУШЕНИЯ В ЛЕГКИХ
Легкие повреждаются первично при ряде генетических заболеваний или вторично – при нарушении функциональной активности клеток, дефектах соединительной ткани или вследствие инфекций [5, 46].
Наиболее распространенными генетически обусловленными заболеваниями являются альфа1антитрипсиновая недостаточность, муковисцидоз, первичная цилиарная дискинезия, семейный идиопатический фиброз, жировой протеиноз, недостаток сурфактанта (проявляющийся альвеолярным протеинозом), трахеобронхомегалия, синдром Вильямса – Кемпбелла с развитием бронхоэктазов (табл. 4-1).
Врожденная патология легких включает в себя бронхогенные кисты, экстралобарную секвестрацию, кистозную аденоматоидную перестройку (рис. 4-39), легочную лимфангиоэктазию, полиальвеолярные доли, гипервоздушность отделов (табл. 4-2).
Таблица 4-1. Генетически обусловленные заболевания с первичным поражением легких
Заболевание
Хромосома
Патогенез
Патология легких
α 1Антитрипсиновая недостаточность
14q32.1/АД
Протеазноантипротеазный дисбаланс
Панацинарная эмфизема
Цилиарная дискинезия
Неизвестно/АР
Нарушение мукоцилиарного клиренса
Респираторные инфекции
Бронхоэктазы
Муковисцидоз
7q31.2/АР
Нарушение транспорта хлора
Респираторные инфекции
Бронхоэктазы
Семейный идиопатический фиброз
Неизвестно/АР
Неизвестно
Диффузный фиброз
Липопротеиноз (болезнь Урбаха–Вейта)
1q21/АР
Отложение липопротеина в верхних дыхательных путях вызывает утолщение слизистой и бронхиальной обструкции
Гиалинизированные или гранулярные отложения в подслизистой оболочке трахеи и бронхов
Дефицит сурфактанта
2p12p11.2
Нарушение функции сурфактанта
Альвеолярный протеиноз
Трахеобронхомегалия (синдром Муниера–Куна)
Неизвестно/АР
Мешотчатые выпячивания между кольцами хряща вследствие атрофии эластических и гладких мышц приводят к нарушению мукоцилиарного клиренса
Повторные респираторные инфекции
Синдром желтых ногтей
Неизвестно/неизвестно
Гипоплазия или обструкция лимфатических протоков, повышенная проницаемость сосудов
Плевральный выпот Бронхоэктазы Повторные респираторные инфекции
Синдром Вильямса–Кемпбелла
Неизвестно/неизвестно
Дефицит хрящевого каркаса субсегментарных бронхов с коллапсом альвеол
Бронхоэктазы
Повторные легочные инфекции
Таблица 4-2. Патология врожденной кистозной болезни легких
Заболевание
Патология
Бронхогенные кисты
Кисты с фиброзномышечными стенками, с наличием хряща, выстланные псевдостратифицированным цилиндрическим эпителием, заполненные жидкостью
Внелегочная секвестрация
Легочная паренхима вне плевральной полости, кровоснабжение обычно системное
Врожденная кистозная аденоматоидная перестройка легких
Тип I (65%)
Множественные кисты ≤10 см, выстланные псевдостратифицированным цилиндрическим эпителием, возможно наличие желез и хряща, скелетная мускулатура отсутствует
Тип II (25%)
Однообразные кисты ≤2,5 см, выстланные кубическим или цилиндрическим эпителием, отсутствие желез и хряща, гладкая мускулатура – в 5%
Тип III (10%)
Кисты ≤0,5 см, высланные кубическим эпителием, отсутствие хряща, желез, гладких мышц
Врожденная долевая гипервоздушность
Гипервоздушность дистальных отделов
Полиальвеолярная доля
Увеличение числа неизмененных альвеол с увеличением объема доли
Лимфангиоэктазия легких
Расширение септиальных и субплевральных лимфатических протоков
path: pictures/0439.png
Рис. 4-39. Три типа врожденной кистозной аденоматоидной перестройки легких (по Stocker T.J., [46]).
type: dkli00064
ЗАКЛЮЧЕНИЕ
Патология трахеи, бронхов и респираторной ткани связана с действием множества факторов. При патологии органов дыхания в процесс в большей или меньшей степени вовлекаются различные отделы легких, содержащих огромное число специализированных клеток. Патологические изменения, происходящие в этом уникальном органе, могут развиваться на клеточном, тканевом и органном уровнях. Патологоанатомическая диагностика заболеваний легких основывается на макро– и микроскопическом исследовании, с использованием методов световой, электронной, флюоресцентной микроскопии, с привлечением современных методов иммуногистохимии. Однако следует помнить, что зачастую для правильного установления диагноза наряду с патологическими методами следует учитывать клинические данные, результаты функциональных, рентгенологических и лабораторных методов исследования.
9
СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ
1.Lawen A: Apoptosis-an introduction. Bioessays 25:888-896, 2003.
2.Wyllie AH: Apoptosis: An overview. Br Med Bull 53:451-465, 1997.
3.Kanduc D, Mittelman A, Serpico R, et al: Cell death: Apoptosis versus necrosis (review). Int J Oncol 21:165-170, 2002.
4.Давыдовский И.В. Общая патология человека.– М., Медгиз. 1961. С.125-143, 301-358. (503 с.)
5.Nishimura S. L., Finkbeiner W.E. General Features of Respiratory Pathology. In: Murray & Nadel’s Textbook of Respiratory Medicine. 4th Edition.
6.Thurlbeck W.M. Pathology of Lung. Second Edit. (Edited by W.M. Thurlbeck, A.M. Chung).– 1995. Thieme MedicalPublishes. Inc. New York, Georg Thieme Verlag, Stuttgart.– New York. – 1178 p.
7.Dail D.H., Hammer S.P. Pulmonary pathology./ Second Edition.– New York. Budapest.: Springer. Verlag.– 1993.– P.110-114, 1640 p.
8.Wright JL: Diseases of the small airways. Lung 179:375-396, 2001.
9.Auerbach O, Stout AP, Hammond EC, et al: Changes in bronchial epithelium in relation to cigarette smoking and in relation to lung cancer. N Engl J Med 265:253-267, 1961.
10. Leske V, Lazor R, Coetmeur D, et al: Tracheobronchopathia osteochondroplastica: A study of 41 patients. Medicine (Baltimore) 80:378-390, 2001.
11. Черняев А.Л, Белевский А.С., Самсонова М.В. Остеохондропластическая трахеобронхопатия // Пульмонология.– 1994.– N2.– С.79-81.
12. Katzenstein A.-L. Katzenstein and Askin’s Surgical Pathology of Non-neoplastic Lung Diseases.– 3rd ed. W.B.Saunders Company., 1997.– 477 p.
13. Valdes-Dapena MA, Nissim JE, Arey JB, et al: Yellow pulmonary hyaline membranes. J Pediatr 89:128-130, 1976.
14. Kunze WP: Senile pulmonary amyloidosis. Pathol Res Pract 164:413-422, 1979.
15. Черняев А.Л., Самсонова М.В. Патологическая анатомия заболеваний легких. Атлас. М., Атмосфера. 2004. 112 с. Чучалин А.Г. Синдром острого повреждения легких // Пульмонология. 2007. 1. C.5-11.
17. Colby TV: Bronchiolitis: Pathological considerations. Am J Clin Pathol 109:101-109, 1998.
18.Demedts M, Costabel U: ATS/ERS international multidisciplinary consensus classification of the idiopathic interstitial pneumonias. Eur Respir J 19:794-796, 2002.
19. Selman M, King TE, Pardo A, et al: Idiopathic pulmonary fibrosis: Prevailing and evolving hypotheses about its pathogenesis and implications for therapy. Ann Intern Med 134:136-151, 2001.
20.Ерохин В.В., Гедымин Л.Е., Лепеха Л.Н., Двораковская И.В. Интерстициальные болезни легких. В кн: Клеточная биология легких в норме и при патологии / Под. Ред. В.В.Ерохина, Л.К.Романовой. М., Медицина. 2000. С.393-397.
21.Thurlbeck WM, Wright JL: Chronic Airflow Obstruction. Hamilton, Ontario: BC Decker, 1999.
22.Есипова И.К. Легкое в патологии.– Новосибирск, наука, сиб.отд., 1975, 310 с.
23.Lumsden A.B., McLean A., Lamb D. Goblet and Clara cells of human distal airways. Evidence for smoking induced changes in their number.// Thorax.– 1984.– Vol.39.– P.844-849.
24.Dalen JE, Haffajee CI, Alpert JS, et al: Pulmonary embolism, pulmonary hemorrhage and pulmonary infarction. N Engl J Med 296:1431-1435, 1977.
25.Sabatine MS, Oelberg DA, Mark EJ, et al: Pulmonary cholesterol crystal embolization. Chest 112:1687-1692, 1997.
26.Coombs RRA, Gell PGH: Classification of allergic reactions responsible for clinical hypersensitivity and disease. In Gell PGH, Coombs RRA, Lachmann PJ (eds): Clinical Aspects of Immunology (3rd ed). Oxford: Blackwell Scientific, 1975, pp 761-781.
27.Johannsson SGO: Raised levels of a new immunoglobulin class (IgND) in asthma. Lancet 2:951-953, 1967.
28.Wild LG, Lopez M: Occupational asthma caused by high-molecular-weight substances. Immunol Allergy Clin North Am 23:235-250, 2003.
29.Koffler D, Sandson J, Carr R, et al: Immunologic studies concerning the pulmonary lesions in Goodpasture's syndrome. Am J Pathol 54:293-305, 1969.
30.Daniele RP: The lungs: Response to immune injury. In Daniele RP (ed): Immunology and Immunologic Diseases of the Lung. Boston: Blackwell Scientific, 1988, pp 187-191.
31.Randhawa P, Yousem SA: The pathology of lung transplantation. Pathol Annu 27:247-279, 1992.
32.Yousem SA: The histological spectrum of pulmonary graft-versus-host disease in bone marrow transplant recipients. Hum Pathol 26:668-675, 1995.
33.Струков А.И., Соловьева И.Р. Морфология туберкулеза в современных условиях. М., Медицина. 1963. 256 с.
34.Sochor FM, Mallory GK: Lung lesions in patients dying of burns. Arch Pathol Lab Med 75:303-308, 1963.
35.Uttley KFM: Death from cold. N Z Med J 47:427-434, 1961.
36.Авцын А.П., Жаворонков А.А., Марачев А.Г., Милованов А.П. Патология человека на Севере. М., Медицина. 1985. 415 с.
37.Hultgren HN: High-altitude pulmonary edema: Current concepts. Annu Rev Med 47:267-284, 1996.
38.Исхаки Ю.Б., Жаворонков А.А., Ростовщиков А.С. Дыхательные пути и высокогорье. Душанбе, «Ирфон». 1989. 128 с.
39.Миррахимов М.М. Человек и горы. /Серия "Медицина". – М.: Знание, 1978, 2, с. 40-60.
40.Churg A, Green FHY (eds): Pathology of Occupational Lung Disease (2nd ed). Baltimore: Williams & Wilkins, 1998. Erasmus J, Erasmus J, McAdams HP, Rossi SE: Drug-induced lung injury. Semin Roentgenol 37:72-81, 2002.
41.Rossi SE: Erasmus J, McAdams HP, Drug-induced lung injury. Semin Roentgenol 37:72-81, 2002.
42.Власов П.А., Квачева Ю.В. Патология легких при остром радиационном поражении. В кн: Патология органов дыхания у ликвидаторов аварии на Чернобыльской АЭС. /Под ред А.Г.Чучалина, А.Л.Черняева, С.Вуазена. М., Грант. 1998. С.65-75.
43.King T.E.Y. Bronchiolitis obliteralis // Lung.– 1989.– Vol.167.– P.69-93.
44.Popper H.H. Bronchiolitis, an update // Virchows Arch.– 2000, v.437.– P.471-481.
45.Brambilla E, Travis WD, Colby TV, et al: The new World Health Organization classification of lung tumours. Eur Respir J 18:1059-1068, 2001.
46.Stocker JT: Congenital and developmental diseases. In Dail DH, Hammar SP (eds): Pulmonary Pathology (2nd ed). New York: Springer-Verlag, 1994, pp 155-190.
document:
$pr:
version: 01-2007.1
codepage: windows-1251
type: klinrek
id: kli30510558
: 04.2. СИСТЕМА СУРФАКТАНТА В НОРМЕ И ПРИ ПАТОЛОГИИ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ
meta:
author:
fio[ru]: Л.Н. Лепеха
codes:
next:
type: dklinrek
code: I.IV
Современное представление о системе легочного сурфактанта (ЛС) сложилось благодаря определенным успехам, достигнутым в области физиологии, биохимии и морфологии органов дыхания [1, 2, 4, 6, 17, 30]. К настоящему времени накоплен большой фактический материал, свидетельствующий о выраженной чувствительности различных ее компонентов к неблагоприятным факторам внешней и внутренней среды, прямом или косвенном участии в патогенезе ряда заболеваний и пневмопатий [2, 29, 34]. Своевременное выявление и коррекция нарушений системы ЛС – новое направление современной медицины, тесно связанное с прогрессом фундаментальной науки.
type: dkli00065
СИСТЕМА ЛЕГОЧНОГО СУРФАКТАНТА В НОРМЕ
ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА И ФУНКЦИИ
Предположения физиологов о наличии в легких поверхностноактивных веществ (ПАВ) сегодня подтверждены многими исследователями, обосновавшими необходимость изменения поверхностного натяжения (ПН) альвеолы в акте дыхания [1, 36]. Если бы в легком не было ПАВ и ПН (сигма) не менялось, то уже одно уменьшение радиуса альвеолярной стенки (r) увеличило бы давление воздуха на нее (P) и вызвало бы ее спадание, так как по закону Лапласа P=2сигма r. Изменяя свои физикохимические свойства синхронно с вдохом и выдохом, ЛС предотвращает развитие ателектаза, создает условия для функционирования альвеол различной величины.
Существенным вкладом для лабораторной оценки функционального состояния ЛС стали работы Клементса, который впервые для измерения ПН смывов и экстрактов из легких использовал весы Вильгельми и получил характерную кривую зависимости величины ПН от площади поверхности (петля гистерезиса). Для ее характеристики автор ввел ряд показателей, которые до сих пор применяют в отечественной и зарубежной практике для оценки поверхностноактивных свойств ЛС [2, 4]. Несмотря на то что указанный способ изучения легочных ПАВ не прямой, полученные с его помощью результаты коррелируют с данными морфологических исследований, позволяют прогнозировать риск развития легочных ателектазов.
Участие ЛС в биомеханике дыхания связано также с его ролью в регуляции водного баланса между кровью и внутриальвеолярным воздухом. В норме онкотическое давление плазмы крови (37 см вод.ст.) складывается из онкотического давления тканевой жидкости (18 см вод.ст), гидродинамического давления крови (15 см вод.ст.) и давления, обусловленного ПН альвеол (4 см вод.ст.). Поэтому при дефиците ЛС и высоком ПН резко увеличивается проницаемость аэрогематического барьера, нарастает транссудация жидкости из кровеносных капилляров, происходит «затопление» альвеол [1].
Наконец, к основным функциям ЛС необходимо относить его участие в противоинфекционной защите органов дыхания, специальное изучение которой началось относительно недавно и ведется по трем основным направлениям:
–выявление бактерицидных свойств ЛС [21, 24];
–оценка влияния ЛС на миграцию, созревание и функциональную активность альвеолярных макрофагов (АМ) [12, 14, 27];
–участие легочных ПАВ в работе мукоцилиарного аппарата [18, 32].
БИОХИМИЧЕСКИЙ СОСТАВ И ВНУТРИАЛЬВЕОЛЯРНАЯ ВЫРАБОТКА
В настоящее время установлено, что ЛС всех млекопитающих, в том числе человека, представлен комплексом липогликопротеидов, в котором 80 – 85% приходится на долю липидов, 8 – 10% – белка и 2 – 5% – углеводов [4, 17]. Основные вещества, способные изменять ПН альвеолы, – фосфолипиды (80%), а среди них – фосфатидилхолин (70 – 80%), больше половины которого представлено его ненасыщенной формой, имеющей два остатка пальмитиновой кислоты, – дипальмитоилфосфатидилхолином. Второй по содержанию фосфолипид (ФЛ) – фосфатидилглицерол (8 – 9%) – имеет самую низкую температуру плавления, быстро переходит в гипофазу, облегчая формирование насыщенного слоя дипальмитоилфосфатидилхолина на границе воздух – жидкость [1, 36]. Остальные ФЛ (сфингомиелин, фосфатидилэтаноламин, фосфатидилсерин, фосфатидилинозитол) присутствуют в составе ЛС в небольших количествах (по 1 – 2,5%) и, вместе с холестерином и триглицеридами, обеспечивают условия стабильного функционирования его внеклеточно расположенных мембран [17].
Помимо фосфолипидов, в составе ЛС выделяют 4 класса специфических, генетически разнородных белка с разной молекулярной массой: SPA, SPB, SPC, SPD [30]. Среди них наиболее изучен SPA, имеющий молекулярную массу 28 – 36 кДа. Он содержит коллагеновый домен, непосредственно взаимодействующий с ФЛ. Во время выдоха часть SPA покидает наружный слой ЛС, увлекая за собой и молекулы ФЛ. Во время вдоха он вновь доставляет комплементарное количество ПАВ на границу раздела фаз.
Другой высокомолекулярный гидрофильный апопротеин ЛС с молекулярной массой 43 – 45 кДа (SPD) обладает кальцийзависимым лектиновым доменом, способным связываться с гликоконъюгатами, присутствующими на поверхности микроорганизмов, а также полиморфноядерных лейкоцитов и АМ [35]. Очевидно, SPD имеет важное значение в активации фагоцитирующих клеток легкого, принимает непосредственное участие в защите альвеол от инфекции.
Низкомолекулярные апопротеины SPB (9 – 18 кДа) и SPC (5 кДа) гидрофобны и в органических растворителях остаются связанными с ФЛ. Их функциональное назначение изучено в меньшей степени, чем SPA. Большинство экспериментальных исследований указывает на то, что белки B и C ускоряют адсорбцию ПАВ на границе раздела фаз, обеспечивают низкое ПН и высокую стабильность поверхностной пленки ЛС. Недавно установлено, что вместе с SPA эти белки участвуют в формировании тубулярного миелина [30].
Углеводные молекулы ЛС представлены глюкозой, галактозой, сиаловой кислотой, фруктозой и галактозамином. Соединяясь с апопротеинами и подвергаясь различным модификационным изменениям, они, очевидно, обеспечивают определенный путь перемещения ЛС внутри клетки, готовность к секреции и другие процессы, связанные с его формированием и выделением на поверхность альвеолы [17].
Место внутриклеточного синтеза всех трех основных компонентов ЛС – альвеолоциты 2го типа (А2). Они имеют характерную для секреторной клетки ультраструктурную организацию. Наряду с митохондриями, они обладают профилями гранулярной цитоплазматической сети и пластинчатого комплекса, микротрубочками и микрофиламентами, содержат гранулы секрета – осмиофильные пластинчатые тельца (ОПТ).
Анализ перемещений меченых предшественников синтеза ЛС по цитоплазме А2 показал, что ФЛ и апопротеины синтезируются в различных отделах гранулярной цитоплазматической сети, затем независимо друг от друга переходят в зону пластинчатого комплекса [6]. Здесь липиды формируют мелкие, «незрелые» ОПТ, которые затем транспортируются в апикальную цитоплазму, к «зрелым» ОПТ, где секрет накапливается. В зоне пластинчатого комплекса белки соединяются с молекулами углеводов, гликозилируются с образованием высокомолекулярных гликопротеидов, которые в составе мультивезикулярных телец также перемещаются к «зрелым» ОПТ и, связываясь с ними, концентрируются в отдельном компартменте.
Секреция всех компонентов ЛС происходит одновременно, содержимое ОПТ выделяется из клеток по мерокриновому типу. Взаимодействие липидов и гликопротеидов происходит в гипофазе внеклеточной выстилки альвеол, где из них формируются мембранные структуры с характерной трехмерной организацией, названные тубулярным миелином (ТМ) [36].
СТРУКТУРНАЯ ОРГАНИЗАЦИЯ
Структурная организация ЛС у всех млекопитающих и человека имеет общий план строения. В его составе (рис. 4-40) принято выделять наружную пленку – мембрану толщиной 8 – 10 нм, расположенную непосредственно на границе раздела фаз воздух – жидкость (собственно ЛС) и связанный с ней, погруженный в гипофазу, ТМ (резервный ЛС).
path: pictures/0440.png
Рис. 4-40. Структурная организация внеклеточных мембран легочного сурфактанта. Ув. 108 000. ЛС – пленка легочного сурфактанта, ТМ – тубулярный миелин, А1 – альвеолоцит 1го типа, ПА – просвет альвеолы.
Ультраструктурная организация ТМ варьирует в зависимости от условий фиксации и плоскости среза. При адекватной фиксации легкого путем перфузии глутарового альдегида через легочную артерию он имеет вид сеточек или параллельно расположенных мембран. Каждая мембрана ТМ состоит из двух осмиофильных слоев толщиной по 2,7 нм, разделенных электронно-прозрачным промежутком в 2,2 нм, т.е. имеет характерную для биологической мембраны трехслойную структуру. Расстояние между двумя такими мембранами составляет 45 – 55 нм, что соответствует толщине гликопротеидного покрытия каждой элементарной мембраны. В углах сеточек ТМ располагаются глобулы иммунологически активных белков плазмы, получающих таким образом возможность первого контакта с инфекцией [21].
Степень развития резервного ЛС варьирует у разных млекопитающих, коррелируя с противоинфекционной устойчивостью вида. Особенно хорошо мембраны ТМ развиты у крыс и крайне слабо у морских свинок, которых широко используют для моделирования различных воспалительных процессов. Поскольку ЛС крайне чувствителен к различным воздействиям и быстро разрушается при подготовке легочной ткани к морфологическому исследованию, в экспериментальных условиях применяют специальные методы фиксации органов дыхания, позволяющие сохранить фрагменты внеклеточной выстилки альвеол и мембраны ЛС на поверхности альвеолярного эпителия [4]. Для оценки структурнофункциональной полноценности системы ЛС у человека можно использовать материал бронхоальвеолярного лаважа (БАЛ), в котором под электронным микроскопом выявляют фрагменты ТМ, а также его видоизмененные структуры.
ОБНОВЛЕНИЕ И УДАЛЕНИЕ ЛЕГОЧНОГО СУРФАКТАНТА
Обновление ПАВ в органах дыхания происходит достаточно интенсивно, за 12 – 24 ч [6]. При этом большую часть «отработанных» молекул ЛС реутилизируют А2, что убедительно продемонстрировано в экспериментах in vitro и in vivo [38, 39]. Реадсорбцию липогликопротеидных комплексов осуществляет эндоцитоз, в механизме которого активная роль принадлежит апопротеину SPA. Он взаимодействует со специфическими рецепторами А2 и, очевидно, регулирует размеры внутриальвеолярного пула ПАВ, выступая в роли аутокринного фактора. Постоянная рециклизация молекул ЛС обеспечивает наиболее экономичный, быстрый и стабильный путь воспроизводства его поверхностноактивных свойств.
Другим важным механизмом удаления ЛС с поверхности альвеол служит его фагоцитоз АМ. Фагоциты располагаются в гипофазе внеклеточной выстилки альвеол непосредственно под мембранами ЛС, тесно к ним прилегают и захватывают фрагменты ТМ. Именно эти структуры выявляются в фагосомах АМ в норме, при компенсаторно-адаптационном увеличении количества ПАВ в единственном легком, при экспериментальном силикозе и пневмоцистозе [4, 12, 13]. Об активном участии АМ в метаболизме ЛС свидетельствует высокое содержание в их цитоплазме различных фосфолипаз, катепсинов, арифсульфатазы и других гидролаз [12, 20]. При этом АМ поглощают не только отработанные, но и «лишние» мембраны внеклеточного ЛС, участвуя тем самым в регуляции количества ПАВ на поверхности альвеол. С нарушениями поглотительной и/или протеолитической способности АМ связано избыточное накопление ЛС во внутриальвеолярном пространстве при альвеолярном липопротеинозе [34].
Помимо клеточных механизмов выведения отработанного ЛС, существует постоянный «дрейф» наружной его пленки из альвеолярного пространства в терминальные бронхиолы, который осуществляется за счет разницы градиентов ПН в этих отделах [1, 36]. Вместе с током подлежащей жидкости выносятся мелкие частицы и АМ, заполненные поглощенным материалом. В нижних отделах дыхательных путей под действием фосфолипаз и протеаз, которые вырабатывают клетки Клара, компоненты ЛС постепенно разрушаются и с помощью мукоцилиарного транспорта выводятся в верхние отделы и ротовую полость.
Доля участия каждого из рассмотренных путей клиренса ЛС зависит от состояния органов дыхания, наличия в альвеолах тех или иных изменений и требует специального изучения в каждом конкретном случае. Так, можно ожидать, что при развитии в респираторном отделе инфекционного процесса, для которого активация АМ является характерным звеном в реакции на возбудитель, эти клетки играют основную роль и в механизме клиренса ЛС. В свою очередь, факторы развития бактериального воспаления могут влиять на функциональное состояние фагоцитов и А2, нарушая процессы метаболизма ЛС, что осложняет течение и исход самого воспалительного процесса.
type: dkli00066
НАРУШЕНИЯ СИСТЕМЫ ЛЕГОЧНОГО СУРФАКТАНТА
РЕСПИРАТОРНЫЙ ДИСТРЕСССИНДРОМ НОВОРОЖДЕННЫХ
О выраженном дефиците ЛС, развитии острой дыхательной недостаточности и гибели недоношенных младенцев (гестационный возраст <27 нед) впервые сообщили физиологи в начале 50х годов [16]. Впоследствии многие исследователи пришли к заключению, что в момент первых дыхательных движений недостаток ЛС при выдохе приводит к резкому повышению ПН альвеол и коллапсу легкого [2, 8]. Полнокровие участков ателектаза и транссудация плазмы из капилляров во внутриальвеолярное пространство (под влиянием избыточного отрицательного давления) способствуют образованию характерных гиалиновых мембран [27]. Их выявляют вдоль стенок полурасправленных альвеол, альвеолярных ходов и почти не встречают у мертворожденных, т.е. не дышавших младенцев.
При ультраструктурном анализе легких новорожденных, погибших от респираторного дистресссиндрома (РДС), была установлена главная причина синдрома – морфологическая незрелость плода, отсутствие в составе респираторного эпителия достаточного числа дифференцированных, содержащих «зрелые» ОПТ, А2 [8]. Для установления биохимической зрелости плода широкое распространение получило определение фосфолипидного состава амниотической жидкости. В тех случаях, когда величина соотношения фосфатидилхолин сфингомиелин <2, стали проводить стимуляцию выработки сурфактанта глюкокортикоидами [16]. Если у новорожденного имеются признаки стернальной ретракции, тахипноэ, одышка, происходит снижение легочного комплаенса, развитие билатеральных инфильтратов, его сразу же переводят на механическую вентиляцию легких и заместительную терапию экзогенным ЛС. Для этого используют синтетические и натуральные препараты (100 мг/кг), что, по данным разных авторов, позволяет снизить смертность от РДС на 10 – 40% [8, 11].
СИНДРОМ ОСТРОГО ПОВРЕЖДЕНИЯ ЛЕГКИХ И РЕСПИРАТОРНЫЙ ДИСТРЕСССИНДРОМ ВЗРОСЛЫХ
Когда у взрослых впервые отметили клинические и морфологические признаки острой дыхательной недостаточности, сходные с РДС новорожденных, авторы назвали этот синдром РДС взрослых. В дальнейшем чаще стали применять термин – острый РДС взрослых, подчеркивающий скорость развития дыхательной недостаточности [29], известный ранее как «шоковое» легкое, некардиогенный отек легкого [7, 9].
После проведения в 1994 г. Согласительной евроамериканской конференции, всесторонне рассмотревшей природу острого РДС взрослых, было решено ввести равноценный термин – синдром острого повреждения легких, отметивший вторичность паренхиматозного повреждения легких, которое начинается с эндотелия капилляров, а не с альвеолярного эпителия, как при РДС новорожденных.
Центральное звено патогенеза синдрома острого повреждения легких и РДС взрослых – системная воспалительная реакция. Она развивается не только при инфекционных заболеваниях легких (пневмонии), но и у больных с тяжелой травмой, постперфузионным легочным синдромом, геморрагическим, септическим или анафилактическим шоком, эндогенными интоксикациями (особенно при остром панкреатите), ДВСсиндромом и другими критическими состояниями организма [3, 10]. Установлено, что действие шокогенных факторов активирует комплемент, в результате чего выделяются анафилотоксины С3а и С5а, влияющие на подвижность клеток белой крови. Агрегаты активированных гранулоцитов прилипают к эндотелию, дегранулируются с высвобождением гидролаз и оксидантов, которые повреждают мембраны аэрогематического барьера и вызывают быстрое повышение его проницаемости для различных компонентов плазмы [9]. Их выход во внутриальвеолярное пространство приводит к механической деструкции, перекисному окислению и ферментативному расщеплению внеклеточных фосфолипопротеидов, взаимодействию их с фибриногеном, формированию гиалиновых мембран [7, 10]. Эти изменения коррелируют с резким снижением поверхностной активности ФЛ, содержанием SPA и SPB в гомогенатах легочной ткани и материале БАЛ [11, 30].
Развитие некардиогенного отека и легочной гипертензии в свою очередь усиливает фильтрационное давление, увеличивает нагрузку на правый желудочек и усиливает отек легких. В условиях тканевой гипоксии А2 переходят на анаэробный метаболизм, активируются каспазы – биохимические маркеры апоптоза [10]. Сначала затухает секреторная, наиболее чувствительная к нарушениям гемоперфузии и альвеолярной вентиляции функция этих клеток, затем – восстановительная.
Такой вариант изменений альвеолярного эпителия наблюдают, в частности, при развитии синдрома острого повреждения легких у больных с остропрогрессирующей казеозной пневмонией. Преобладание в альвеолах кубического эпителия, состоящего из А2 без признаков выработки ЛС (рис. 4-41) зависит от глубины и распространенности деструктивных изменений аэрогематического барьера, наличия внутриальвеолярного отека и гиалиновых мембран, максимально выраженных на аутопсиях. В операционном материале обычно можно наблюдать трансформацию А2 в А1; выявляют отдельные А2 с гиперсекреторной активностью. Своевременное проведение базовой терапии с интенсивным интратрахеальным введением препаратов натурального ЛС позволяет добиться заметного улучшения оксигенации у таких больных [11].
path: pictures/0441.png
Рис. 4-41. Альвеолоциты 2го типа без признаков секреторной активности формируют кубический эпителий, выстилающий альвеолу, при остром повреждении легких. Ув. 8900. А2 – альвеолоцит 2го типа.
Вместе с тем данные экспериментальных и клинических наблюдений по применению различных препаратов ЛС в комплексном лечении синдрома острого повреждения легких и РДС взрослых достаточно противоречивы [3, 10, 30]. Обнадеживающие результаты получены только при использовании природного, содержащего специфические белки сурфактанта в суммарной дозе 400 – 800 мг/кг [11, 19, 25].
В настоящее время в мировой практике отрабатывают тактику раннего выявления и профилактики развития синдрома острого повреждения легких, где с учетом тяжести поражения в комплексе с методами прямой детоксикации и плазмафереза разрабатывают индивидуальные схемы заместительной сурфактанттерапии [3].
АЛЬВЕОЛЯРНЫЙ ПРОТЕИНОЗ
Альвеолярный протеиноз был впервые описан как легочное заболевание с признаками дыхательной недостаточности и накоплением во внутриальвеолярном пространстве ШИКпозитивного «белкового» материала [36]. В дальнейшем было установлено, что наряду с белками в альвеолах определяют фосфолипиды ЛС, количество которых варьирует в зависимости от формы и стадии альвеолярного протеиноза [34].