Текст книги "Инфекционные болезни и профилактика внутрибольничных инфекций"

Автор книги: Владимир Цыркунов

сообщить о нарушении

Текущая страница: 43 (всего у книги 67 страниц)

5– й класс – интегрирующие индикаторы, или интеграторы. Эти индикаторы реагируют на все критические параметры того или иного метода стерилизации. Динамика срабатывания такого индикатора соответствует кривой гибели бактериальных спор, применяемых в качестве тестовых для данного вида стерилизации (паровой или этиленоксидной). Иначе говоря, контрольные значения параметров для индикаторов класса 5 определяются скоростью инактивации тест-микроорганизмов с определенными значениями величины D, поэтому интегратор подтверждает достижение всеми критическими параметрами стерилизации значений, необходимых для гибели тест-микроорганизмов.

6– й класс – индикаторы-эмуляторы. Эти индикаторы должны реагировать на все контрольные значения критических параметров метода стерилизации (определенной группы режимов). Контрольные значения параметров определяются соответствующими режимами стерилизации. Реагируют, если все критические параметры достигли регламентированных значений.

Так как химические индикаторы срабатывают до своего конечного состояния в процессе стерилизационной обработки, и результат их работы анализируется оператором сразу же после стерилизационного цикла, то химический контроль является оперативным методом контроля. И это – его главное преимущество.

Следует помнить, что для получения полноценной картины о стерилизационной обработке с помощью контроля химическим методом необходимо использовать все виды химических индикаторов. Но и в этом варианте анализируются только параметры, а не сам стерилизационный процесс. Таким образом, химический метод контроля, как и физический, является косвенным и оценка его результата не дает возможности достоверно говорить об эффективности стерилизации.

Биологические индикаторы

Наряду с физическим и химическим применяется бактериологический метод контроля стерилизации. Он предназначен как для контроля эффективности конкретного стерилизационного цикла, так и для валидации оборудования. До недавнего времени для контроля паровой и воздушной стерилизации использовались пробы садовой земли, содержащей микроорганизмы, высокорезистентные к воздействию стерилизующих факторов. Однако устойчивость микроорганизмов в различных пробах неодинакова, что не позволяет стандартизировать результаты контроля.

В настоящее время для проведения бактериологического контроля должны использоваться только биоиндикаторы, имеющие дозированное количество спор тест-культуры.

Тестовые микроорганизмы, т. е. культура микроорганизмов, используемая при изготовлении инокулированных носителей для контроля стерилизации, должны документировано относиться к признанной коллекции культур – международной коллекции находящей под юрисдикцией Будапештского договора о международном признании коллекций микроорганизмов для целей патентования и регулирования,

Биологический индикатор представляет собой готовый к применению инокулированиый носитель в первичной упаковке, обеспечивающий определенную резистентность (устойчивость) к конкретному режиму стерилизации. Иными словами, биоиндикатор – это препарат из непатогенных спорообразующих микроорганизмов, с известной высокой устойчивостью к данному типу стерилизационного процесса.

При этом для паровой стерилизации должны использоваться индикаторы, содержащие стандартизированную популяцию высокорезистентных спор Geobacillus stearolhermophilus, а для воздушной и этилен-оксидной – высокорезистентных спор Bacillus atrophaeus (прежнее название Bacillus subtilis).

Конструктивно биологические индикаторы бывают 2 типов: отдельные полоски со спорами, помещенные в первичную упаковку и автономные биологические индикаторы. Для использования первых требуется дополнительно посев в питательную среду в асептических условиях бактериологической лаборатории и инкубация в течение 7 суток до получения результата.

При этом сохраняется риск получения ложноположительного результата, обусловленного внешней контаминацией.

Автономные биоиндикаторы – биологические индикаторы «ЗМ Аттест», первичная упаковка которых содержит ампулу с питательной средой, необходимой для выращивания тест-микроорганизмов.

После завершения стерилизационного цикла автономный биоиндикатор переносится в инкубатор-термостат, где ампула разрушается, питательная среда пропитывает носитель со спорами и происходит инкубация в течение 24–48 часов (в зависимости от вида стерилизации). Результат (наличие или отсутствие микробного роста) определяется визуально по изменению или сохранению первичной окраски питательной среды.

Такой автономный биологический индикатор является наиболее удобным средством биологического контроля. Его главными преимуществами являются:

1. скорость получения биологического подтверждения эффективности стерилизации;

2. отсутствие риска внешней контаминации после стерилизации, что обеспечивает однозначную интерпретацию получаемого результата;

3. возможность использования в любом ЛПУ для самоконтроля при наличии термостата и как следствие – создание полноценной системы контроля стерилизации с использованием всех трех методов контроля.

В настоящее время внедрены новые биоиндикаторы «ЗМ Аттест» рапидного (ускоренного) типа, в которых проявление микробного роста (подтверждение неэффективности стерилизации) фиксируется автоматическим считывающим устройством (авторидером) по возникновению флуоресцентного свечения питательной среды, содержащей специальную добавку. Такой метод позволяет получить объективный и достоверный биологический ответ уже через 3 часа инкубации и позволяет использовать биологический метод контроля стерилизации не только для периодического, но и для текущего контроля качества.

Независимо от типа используемого биоиндикатора в инкубатор (термостат) помещается пара индикаторов: прошедший стерилизационный цикл вместе с загрузкой и контрольный – из той же серии, но не стерилизовавшийся. Контрольный индикатор должен дать положительный ответ, с которым и следует сравнивать результат тестового индикатора.

Контроль эффективности стерилизации с помощью биоиндикаторов по действующим нормативам осуществляется ежемесячно, но рекомендуется проводить его не реже 1 раза в неделю. В зарубежной практике принято применять биологическое тестирование ежедневно.

В ряде случаев возникает необходимость проведения контроля с помощью биоиндикаторов каждой загрузки стерилизатора. Прежде всего, речь идет о стерилизации инструментов, используемых для выполнения сложных оперативных вмешательств, требующих применения высоконадежных стерильных материалов. Каждая загрузка при стерилизации имплантируемых изделий также должна подвергаться бактериологическому контролю. Обязательным является биологический контроль каждого стерилизационного цикла низкотемпературных методов стерилизации (газового и плазменного). При этом использование простерилизованных материалов задерживается до получения отрицательных результатов контроля.

Программа контроля эффективности стерилизации Программа контроля эффективности стерилизации обеспечивает всесторонний мониторинг стерилизационного процесса, практически исключающий риск того, что сбой или неэффективность стерилизации останутся незамеченными. Это программа состоит из пяти взаимосвязанных этапов, предоставляющих возможность контроля каждого аспекта стерилизационного цикла, что позволяет установить и поддерживать полноценный и достоверный мониторинг процесса стерилизации в каждой клинике. Этими этапами являются:

1. контроль работы оборудования;

2. контроль экспонирования;

3. групповой контроль загрузки (партии);

4. индивидуальный контроль упаковок;

5. ведение учета.

Контроль работы оборудования

Контроль оборудования – это один из наиболее значимых этапов программы контроля эффективности стерилизации, включающий мониторинг адекватной работы стерилизатора при помощи разнообразных устройств регистрации. В первую очередь такой контроль осуществляется с помощью физических средств измерения, являющихся неотъемлемой частью самого стерилизатора: термометров, манометров, таймеров. Эти устройства подтверждают способность стерилизатора создавать требуемые параметры цикла в камере стерилизатора. Кроме того, контроль форвакуумных автоклавов включает обязательный ежедневный тест Боуи-Дика, который следует проводить J:: в начале рабочего дня в пустой камере после цикла разогрева. Данный тест позволяет оценить эффективность проникновения пара во все части загрузки. Следует помнить, что проникновение стерилизующего агента будет недостаточным в случае наличия воздуха или неконденсирующихся газов внутри загрузки, возникающего как из-за неудовлетворительного удаления воздуха или негерметичной камеры, так и из-за поступления данных газов в стерилизатор через систему подачи пара. Для теста Боуи-Дика применяется химический индикатор 2 класса, например «ЗМ Комплай» 0135.

Контроль экспонирования

Контроль экспонирования – это один из этапов программы контроля эффективности стерилизации, позволяющий оператору визуально отличить обработанные (стерилизованные) и необработанные (нестерилизованные) медицинские изделия, без необходимости вскрывать упаковку. Для этой цели используются наружные химические индикаторы 1 класса (индикаторы– свидетели), изменяющие свой цвет при экспозиции стерилизующего агента. Действующие нормативные документы требуют применять наружные индикаторы Контроля экспонирования для каждой упаковки или индивидуального изделия. Контроль экспонирования не должен подтверждать достижение адекватных параметров стерилизационного цикла, а только факт стерилизующего воздействия, поэтому применение индикаторов другого класса не допускается. В качестве наружных индикаторов чаще всего применяются самоклеющиеся индикаторные ленты «ЗМ Комплай» 1322 (паровая), 1224 (этилен-оксидная) и 1226 (воздушная), которые не только выполняют функцию индикатора, но и скрепляют листовую упаковку или герметизируют стерилизационные пакеты при отсутствии термозапечатывающей машины.

Контроль загрузки (партии)

Контроль загрузки играет исключительно важную роль в мониторинге стерилизационного процесса. Контроль загрузки подразумевает использование индикаторов для подтверждения факта гибели микроорганизмов в ходе стерилизации в каждой загрузке. Иначе говоря, на основании этого элемента контроля оценивается эффективность стерилизации всей загрузки в целом и возможность ее дальнейшего отпуска из стерилизационного отделения. Для данной цели используется тестовая упаковка, представляющая типичную для данной загрузки упаковку (по содержанию и виду упаковочного материала) с вложенным химическим индикатором 5 класса (интегратором), например «ЗМ Комплай» 1243. Тестовая упаковка закладывается в наиболее критическую точку камеры (например, у водостока или у двери). По завершении цикла стерилизации такая упаковка вскрывается непосредственно в стерилизационной и по результатам расшифровки индикатора принимается решение об отпуске всей обработанной загрузки в дальнейшую работу. Наиболее достоверным является использование в тестовой упаковке биологических индикаторов «ЗМ Аттест», которые подтверждают не только достижение критических параметров стерилизационного цикла, но и сам факт гибели устойчивых бактериальных спор.

Индивидуальный контроль упаковки

Контроль упаковки – это ключевой этап программы контроля эффективности стерилизации, заключающийся в использовании химических индикаторов внутри каждой индивидуальной упаковки, пакета, бокса, контейнера и пр. Цель данного этапа – оценить соблюдение нормативных параметров стерилизационного процесса внутри каждой упаковки. Следует отметить, что Контроль упаковки служит обязательным дополнением к Контролю загрузки, дня осуществления которого используются тестовые упаковки с биологическими или химическими индикаторами, позволяющие оценить эффективность стерилизации всей загрузки стерилизатора в целом.

Несмотря на то, что биологические индикаторы, используемые на этапе Контроля загрузки, могли бы свидетельствовать об адекватном уровне стерилизации, «локальные» проблемы, обусловленные человеческим фактором или механическими недостатками стерилизационного оборудования, могут приводить к возникновению проблем с качеством стерилизации отдельно взятой упаковки.

Причинами таковых проблем могут являться:

1. Наличие воздушных карманов или остаточного воздуха в результате сбоев в работе вакуумной системы, наличие воздуха в линиях, а также неконденсируемых газов из системы подачи пара.

2. Упаковка слишком большого размера или заполнена содержимым слишком плотно.

3. Неправильное распределение загрузки в объёме стерилизационной камеры.

4. Упаковочный материал непроницаем для стерилизационного агента.

5. Неадекватное кондиционирование упаковок перед стерилизацией этилен-оксидом или неадекватное увлажнение в ходе стерилизационного цикла.

6. Неправильный выбор параметров стерилизации – времени и температуры.

Для внутреннего контроля упаковки применяются химические индикаторы 4, 5 и 6 классов. Мультипараметрические (4 класс) – позволяют оценить 2 и более параметра стерилизационного процесса. Интеграторы (5 класс) – наиболее информативные и достоверные химические индикаторы, контролирующие все параметры процесса стерилизации и дающие интегрированный (объединенный) ответ, сопоставимый с биоиндикатором. Эмуляторы (6 класс) – специфичны для конкретного цикла стерилизации и реагируют, если все критические параметры достигли заданных значений.

По дизайну и механизму действия индикаторы для внутреннего контроля упаковок представлены в виде:

3. Интеграторов (движущийся фронт)

4. Индикаторов с последовательным ответом

5. Полосок, изменяющих цвет

Интеграторы (движущийся фронт) являются наиболее совершенным и достоверным видом индикаторов. В получаемом с их помощью ответе объединены физические и химические процессы, что дает результат, сопоставимый с биологическим индикатором. Дополнительным преимуществом индикаторов данного типа является простота оценки результатов: в ходе цикла стерилизации происходит передвижение окрашенного вещества из зоны «Reject (отказ)» в зону «Accept (допуск)». Предназначены для всех циклов паровой стерилизации.

Индикаторы с последовательным ответом – наиболее информативные из химических индикаторов. Они последовательно реагируют на все параметры стерилизационного цикла, позволяя проводить контроль, как за соотношением время/температура, так и за качеством стерилизационного агента (насыщенностью пара). Предназначены для различных циклов паровой стерилизации.

Изменяющие цвет полоски являются наиболее распространённым видом химических индикаторов. На поверхность таких индикаторов нанесен химический краситель, изменяющий свой цвет под воздействием определённых факторов стерилизационного процесса. При этом достижение адекватных параметров стерилизации оценивается в сравнении с представленным эталоном цвета. Выпускаются для различных видов стерилизации, включая паровую, воздушную, этилен-оксидную и плазменную.

Таким образом, комплекс мероприятий по мониторингу стерилизации и оценке ее эффективности включает:

1. Ежедневный контроль работы оборудования с помощью теста Боуи-Дика (химический индикатор 2 класса) – для форвакуумных автоклавов

2. Контроль работы оборудования в каждом цикле стерилизации с помощью встроенной системы самотестирования (при ее наличии), встроенных датчиков температуры, давления и таймеров

3. Контроль каждой упаковки в отношении экспонирования ее воздействию стерилизующих факторов – с помощью внешнего химического индикатора 1 класса (индикаторной ленты, метки на одноразовой упаковке и т. п.)

4. Групповой контроль каждой стерилизуемой партии на эффективность стерилизации с помощью тестовой упаковки с биоиндикатором или химическим индикатором 5 класса (интегратором), если не показано обязательное использование биоиндикатора

5. Индивидуальной контроль каждой стерилизуемой упаковки с помощью внутреннего химического индикатора 4–6 классов, соответствующего виду стерилизации

6. Учет результатов мониторинга в установленном порядке (журнал учета установленной формы, электронная база данных и т. п.)

Хранение стерилизованных материалов.

Структура ответа: Сроки хранения стерилизованных материалов. Организационные основы контроля стерилизации

Для обеспечения стерильности ИМН требуется не только применение современных методов стерилизации, но и использование надежных упаковочных материалов, обеспечивающих защиту простерилизованных изделий от повторного инфицирования на путях транспортировки к потребителю и во время хранения.

При паровом, воздушном, газовом и плазменном методах изделия стерилизуют в упакованном виде, используя стерилизационные упаковочные одноразовые материалы или многоразовые контейнеры (стерилизационные коробки с фильтрами), разрешенные применительно к конкретному методу стерилизации в установленном порядке.

Хранение изделий, простерилизованных в упакованном виде осуществляют в шкафах, рабочих столах. Сроки хранения указываются на упаковке и определяются видом упаковочного материала и инструкцией по его применению.

Срок хранения стерильного изделия в упаковке зависит только от вида упаковочного материала и соблюдения условий хранения. Считается, что при соблюдении требований по условиям хранения изделие сохраняет свою стерильность до момента вскрытия или повреждения упаковки. Метод стерилизации не влияет на продолжительность хранения простерилизованных изделий.

Стерилизация изделий в неупакованном виде допускается только при децентрацизованной системе обработки в следующих случаях:

1. при использовании растворов химических средств для стерилизации изделий, в конструкции которых использованы термолабильные материалы;

2. при стерилизации металлических инструментов термическими методами (гласперленовый, воздушный, паровой) в портативных стерилизаторах.

Все изделия, простерилизованные в неупакованном виде, должны быть незамедлительно использованы по назначению. Запрещается их перенос в другое помещение.

При необходимости, инструменты, простерилизованные в неупакованном виде одним из термических методов, после окончания стерилизации допускается хранить в разрешенных к применению в установленном порядке бактерицидных (оснащенных ультрафиолетовыми лампами) камерах в течение срока, указанного в руководстве по эксплуатации оборудования, а в случае отсутствия таких камер – на стерильном столе не более 6 часов.

Изделия медицинского назначения, простерилизованные в стерилизационных коробках допускается использовать в течение не более чем 6 часов после их вскрытия.

Бактерицидные камеры, оснащенные ультрафиолетовыми лампами, допускается применять только с целью хранения инструментов для снижения риска их вторичной контаминации микроорганизмами в соответствии с инструкцией по эксплуатации. Запрещается применять такое оборудование с целью дезинфекции или стерилизации инструментов.

При стерилизации изделий в неупакованном виде воздушным методом не допускается хранение простерилизованных изделий в воздушном стерилизаторе и их использование на следующий день после стерилизации.

При стерилизации химическим методом с применением растворов химических средств отмытые стерильной водой простерилизованные изделия используют сразу по назначению или помещают на хранение в стерильную стерилизационную коробку с фильтром, выложенную стерильной простыней, на срок не более 3 суток.

Все манипуляции по накрытию стерильного стола проводят в стерильном халате, маске и перчатках, с использованием стерильных простыней. Обязательно делают отметку о дате и времени накрытия стерильного стола. Стерильный стол накрывают на 6 часов. Не использованные в течение этого срока материалы и инструменты со стерильного стола направляют на повторную стерилизацию.

Не допускается использование простерилизованных изделий медицинского назначения с истекшим сроком хранения после стерилизации.

Плановый периодический контроль качества стерилизации проводится персоналом центров дезинфекции и стерилизации и дезинфекционных отделов центров гигиены и эпидемиологии, а также персоналом лечебно– профилактических учреждений.

В функции персонала центров дезинфекции и стерилизации и дезинфекционных отделов ЦГЭ и 03 входит контроль работы стерилизаторов на объектах надзора и использованием физического, химического и бактериологического методов. Контроль осуществляется:

1. после монтажа и ремонта аппаратов;

2. плановый контроль в порядке государственного санитарного надзора не реже 2 раз в год;

3. по показаниям – при обнаружении неудовлетворительных результатов контроля стерильности – в отношении каждой последующей загрузки до устранения выявленных недостатков.

В функции персонала лечебно-профилактических организаций входит самоконтроль работы стерилизаторов, который осуществляется физическим и химическим методами – при каждой загрузке стерилизаторов, бактериологическим – ежемесячно. Биологический контроль каждой загрузки является обязательным при стерилизации имплантируемых изделий. Следует отметить, что шовный материал также является имплантируемым ИМН, поэтому при его стерилизации обязателен биологический контроль в отношении каждой загрузки. Для всех видов низкотемпературной стерилизации также требуется биологический контроль каждой загрузки стерилизатора. В большинстве развитых стран мира применяется ежедневный биологический контроль стерилизации, а внедрение рапидных биологических индикаторов «ЗМ Аттест Рапид» позволило перейти на биологический контроль каждой стерилизуемой загрузки. Результаты контроля регистрируют в специальном журнале.

Таким образом, важнейшим звеном в профилактике внутрибольничных инфекций является безопасность оказания медицинской помощи в плане предупреждения экзогенного инфицирования организма. Ведущая роль в этом принадлежит дезинфекции и стерилизации.

На фоне достижений реаниматологии увеличилась доля лиц с тяжелой патологией, возникновению внутрибольничных инфекций у которых способствует как наличие входных ворот для инфекционного начала (раны, ожоговые поверхности и т. д.), так и риск инфицирования при проведении большого числа инвазивных диагностических, а также лечебных процедур, необходимых для поддержания жизнедеятельности организма. В результате формируется мощный искусственный (артифициальный) механизм передачи микроорганизмов, связанный с выполнением инъекций, хирургических операций, эндоскопических исследований.

В связи с этим, весь медицинский инструментарий, используемый для обслуживания больных, перевязочный и шовный материал, медикаменты, воздух, постельные принадлежности и предметы обстановки, находящиеся в помещении, и сами помещения, должны подвергаться стерилизации или дезинфекции. В конечном итоге успех в борьбе с внутрибольничными инфекциями решает качество эпидемиологического надзора, адекватность проводимых мероприятий в конкретной эпидемической ситуации, внедрение новых эффективных форм и методов работы, профессионализм медицинских работников, тесное взаимодействие специалистов различных лечебно-профилактических организаций и ЦГЭ.

Дезинсекция, виды и методы.

Структура ответа: Определение дезинсекции. Виды и методы. Характеристика некоторых веществ, применяемых для дезинсекции.

Дезинсекция – комплекс мероприятий, направленных на удаление или уничтожение насекомых и членистоногих (мухи, вши, комары, блохи, клещи и др.) как переносчиков инфекционных заболеваний или нарушающих отдых людей и санитарно-гигиеническое состояние. Кроме того, под дезинсекцией понимают комплекс мероприятий, направленных на уничтожение насекомых и членистоногих, наносимых вред сельскохозяйственным культурам, животноводству, лесному хозяйству, постройкам, различным продуктам и другим товарам в складских помещениях и т. д. Поэтому дезинсекционные мероприятия проводят не только медицинские работники, но и работники других соответствующих служб.

Впервые в медицинскую практику термин «дезинсекция» был введен в 1909 г. Н. Ф. Гамалея, понимая под этим комплекс мероприятий по уничтожению насекомых (insectum – насекомое, cedo – убиваю) – переносчиков инфекционных заболеваний. Однако вскоре было установлено, что в распространении инфекционных заболеваний принимают участие не только насекомые, но и членистоногие (клещи). Поэтому в настоящее время это понятие расширено и включает меры борьбы с насекомыми и членистоногими. Вред, приносимый членистоногими человеку, не ограничивается переносом и распространением многих инфекционных заболеваний (брюшной тиф, паратифы А и В, дизентерия, холера, сыпной и возвратный тифы, клещевой энцефалит, туляремия, малярия, эндемичные боррелиозы и риккетсиозы, желтая лихорадка и многие другие заболевания), но, обитая в жилых помещениях и в местах хозяйственной деятельности человека, наносят вред его здоровью, лишают отдыха и сна (блохи, мухи, клопы, комары, гнус и др.), создают антисанитарную обстановку, загрязняют пищевые продукты (мухи, тараканы, муравьи), портят одежду и домашнюю обстановку (моль) и т. п.

Различают два вида дезинсекции: профилактическую и истребительную.

Профилактическая дезинсекция проводится с целью недопущения возникновения и распространения инфекционных заболеваний – переноса от животного к человеку или от человека к человеку патогенных возбудителей, улучшения санитарно-гигиенического состояния в жилых помещениях, лечебно– профилактических и детских учреждениях, на предприятиях и в учреждениях производства, хранения и реализации пищевых продуктов, водоснабжения и т. д.

Истребительная дезинсекция проводится, кроме медицинских работников, работниками всех других предприятий, учреждений и служб (сельского хозяйства, пищевой, лесной, авиационной и др.) и направлена на уничтожение насекомых и членистоногих во всех стадиях развития и во всех средах обитания их.

Различают следующие методы дезинсекции:

1. физические

2. биологические

3. химические.

Физические методы.

Механические способы: уборка помещений, вытряхивание, выколачивание, стирка, засечивание окон и дверей, использование мухоловок, липучей бумаги и др.

Физические методы: кипячение, сжигание малоценных вещей, выжигание паяльной лампой мест, заселенных клопами, тараканами и другими насекомыми, проглаживание горячим утюгом для уничтожения вшей, гнид и т. д. В последнее время для борьбы с членистоногими широко используется ультразвук.

Биологические методы

Это использование птиц, грызунов, холоднокровных – лягушек, рыб (гамбузии и др.), хищных насекомых (божья коровка, хищные клопы, пауки, клещеядные трипсы, мухи-златоглазки и др.), насекомых– наездников, живущих на теле насекомых или членистоногих и откладывающих яйца в тело или в яйца их. В последние годы эти методы начали активно изучать и использовать (построены биофабрики для разведения хищных насекомых – энтамофагов или наездников и др.). Наконец, микробиологические методы – использование возбудителей, вызывающих гибель насекомых и членистоногих (битоксибациллин, энтамобактерин для уничтожения колорадского жука, грибы, простейшие мономорфные и диморфные микроспоридии, бактерии, вирусы, нематоды для борьбы с комарами и т. д.). Однако последние способы находятся в стадии изучения и в настоящее время не нашли широкого применения. Однако эти методы наиболее перспективны, так как при помощи их целенаправленно уничтожаются определенные виды насекомых или членистоногих – переносчиков заболеваний, но не уничтожаются полезные насекомые, а, следовательно, не нарушается биоценоз. Поэтому за этими методами, несомненно, будущее в борьбе с переносчиками заболеваний и другими вредными насекомыми и членистоногими. Очень мало изучены методы использования растений для дезинсекции (мухомор и др.).

Химические методы.

Наиболее широко в настоящее время применяются ядовитые химические вещества.

Все химические вещества, применяемые для дезинсекции, в зависимости от способов (путей) проникновения в организм членистоногих можно разделить на следующие группы:

1. контактные – проникающие в организм через наружные покровы (кутикулу) или трахейную систему;

2. кишечные – проникающие с пищей и водой через желудочно-кишечный тракт;

3. дыхательные (фумиганты) – проникающие через дыхательные пути;

4. универсальные – проникающие любым путем.

К контактным веществам относят: пиретрум – порошок цветов кавказской, персидской или далматской ромашки; настой пиретрума на керосине или лигроине-флицид – распыляют в воздухе; анабазин-сульфат – анабазин в растворе сернокислой соли. Пиретрум применяют для уничтожения всех насекомых, флицид – для уничтожения их окрыленных форм, анабазин-сульфат – в виде 5% порошка или 3% раствора для уничтожения мух, комаров и моли.

Для уничтожения клопов и вшей применяют 5% мыльно-феноловый раствор 45–50°С.

Крезолы (черная или неочищенная карболовая кислота, лизол, нафтолизол) применяют для уничтожения неокрыленных форм мух (личинок, куколок) путем распыления. Для уничтожения блох, вшей, тараканов, клопов применяют 10% растворы лизола и нафтолизола 45–50°С.

К этой группе относятся нефть и продукты ее перегонки бензин, керосин, ксилол, зеленое мыло. Мыльно-бензиновые и мыльно-керосиновые эмульсии (30 частей мыла, 25 частей горячей воды и 45 частей керосина или бензина) применяют для уничтожения вшей: на голове – 15 мин., затем промывают теплой водой и вычесывают частым гребнем, в подмышечной впадине, на лобке – 5 мин. Такую обработку проводят 3–4 раза с промежутками в 5 дней.

Нефтью заливали тонким слоем водоемы для уничтожения личинок комаров.

Зеленое мыло (содержит более 50% ароматических углеводородов) применяют для уничтожения личинок и куколок мух в земле, используя 1–2 кг на 1 м2.

Скипидар или смесь его с керосином в виде пасты с мылом, из которой готовят 10% эмульсию применяют для уничтожения блох и клопов.

К кишечным веществам относят: парижскую зелень, арсенит натрия, арсмаль (медная соль ортомышьяковистой кислоты) применяют для уничтожения личинок комаров; фторид натрия в виде порошка с равным количеством талька, картофельной муки и др. – для уничтожения тараканов; бура – обезвоженная (прогретая на сковороде) в виде порошка (60 г буры, 20 г сахарной пудры, 20 г крахмала) или приманок (буры 20 г, салициловой кислоты 20 г и 60 г жидкой каши) применяют для уничтожения тараканов и домового муравья.

Борная кислота и салицилат натрия в виде порошка или 2% растворов, которыми пропитывают белые сухари, применяют для уничтожения тараканов.