Текст книги "Культура кактусов"

Автор книги: Сергей Батов

сообщить о нарушении

Текущая страница: 16 (всего у книги 30 страниц)

Одним из методов восстановления жизненных сил подвоя является полный продолжительный покой прививки с дальнейшим ее пробуждением, пересаживанием в новый субстрат, щадящий режим культивирования. Но такой метод стоит рекомендовать только для крупных взрослых растений, когда перепрививка испортит их внешний вид. В остальных случаях целесообразнее перепривить кактусы, т.к. важно не состояние подвоя, а привитое растение.

Для молодых кактусов, деток и сеянцев перепрививка на новые подвои особенно важна ввиду интенсивного роста привитых растений. Им требуется гораздо большее количество пластических веществ, чем может пропустить зона срастания*.

Фото 399 – 401. Влияние привоя, в корнесобственном состоянии имеющего реповидное утолщение корня на подвой: Neogomesia agavoides на Eriocereus jusbertii (399) и Roxeocactux kotschoubeyanus на Pereskiopsis velutina (400, 401).

Таким образом, рост привитого кактуса лимитируется транспортом биологически-активных, гормональных и пластических веществ через зону срастания.

Кактусы, используемые в качестве подвоев, можно разделить на две основные группы: подвои для постоянного культивирования и специализированные подвои.

Подвои для постоянного культивирования требуют особого внимания от кактусовода. Состояние прививки зависит, в основном, от состояния подвоя и, в частности, от состояния его корневой системы. С другой стороны, такому подвою не следует выполнять функцию чрезмерного ускорителя роста привитого кактуса. Во всем комплексе подвой-привой со временем устанавливаются стабильные гормональные поля. Естественно и режим культивирования должен быть щадящим, подчиняющимся ритмике подвоя.

Кстати, о ритмике. Чередование циклов видимого роста и его отсутствия «записано» в генном коде растения. Такие периоды не одинаковы для кактусов, растущих в местах с различной климатической и геологической характеристикой.

«Жизненный путь» привитого кактуса можно разделить на несколько этапов:

– отсутствие видимого роста ввиду травмы, гормонального стресса и недостатка жизненно важных веществ;

– начало роста (регенерация тканей) и активный рост;

– чрезмерный перерасход энергетических и пластических веществ и вследствие этого – стагнация;

– после «отдыха» прививки, возобновление роста или же глубокая стагнация из-за несовпадения биологических циклов.

Следует помнить, что глубокий покой вызывается, в основном, повышенной концентатра-цией АБК. Растению, погруженному в состояние глубокого покоя, следует предоставить соответствующие условия содержания: снизить температуру воздуха и влажность субстрата.

Корни подвоя нуждаются в притоке питательных веществ, достаточном доступе кислорода, без которого невозможны процессы всасывание этих веществ. Подкармливать подвои можно смесями минеральных удобрений, но лучше использовать настой чернозема или другого богатого гумусом субстрата, например, биогумуса. С помощью органических удобрений обогащается зона корневой активности такими необходимыми для растений веществами, как гуминовые кислоты и биостимуляторы гумуса.

Перекорм кактусов-подвоев минеральными удобрениями является одной из причин плохого срастания, отторжения привоя и снижения невосприимчивости к различным заболеваниям.

Нелишней будет подкормка корневой системы в период вегетации раствором янтарной кислоты из расчета 20 мг/л и обработка раствором гетероауксина – 3 мг/л.

Хорошо отзываются привитые растения на подкормку настоем крапивы: 1 кг стеблей и листьев этого растения замачивают в 10 л воды комнатной температуры в течение двух недель.

Как и у всех кактусов, наиболее чувствительное место у подвоев – корневая шейка или зона отрастания придаточных корней от стебля. Поэтому при посадке подвоев в горшки или плошки гораздо безопаснее не допускать контакта с почвой и мульчировать корневую шейку мелкими камешками или крупным песком.

Специализированные прививки не ставят целью сохранение подвоя, если конечно коллекционер не планирует выращивать привитые на них кактусы долгое время. Также не важен и их внешний вид. Здесь можно, и даже целесообразнее производить прививку на отрастающие от подвоя-маточника боковые побеги. Это лучше, чем прививать на укорененные черенки-подвои, т.к. детка, не удаленная с маточника, наряду с активно вегетирующим стеблем имеет уже развитую, мощную корневую систему маточника. Выросшие на таких несимпатичных и корявых подвоях кактусы впоследствии укореняют или перепрививают*. Возможна двойная, тройная и т.д. прививка.

Очень интересные физиологические процессы происходят при привитии кактуса-привоя на лишенную корней часть стебля кактуса-подвоя. Эта прививка является своеобразной палочкой-выручалочкой, когда под рукой нет подходящего укорененного подвоя. Причем черенок подвоя может быть срезан не только поперек, но и вдоль стебля для того, чтобы максимально закрыть площадь раневой поверхности у кактуса-привоя.

В практике имеет место как прививка на разрезанный вдоль кусок стебля кактуса-подвоя,

так и прививка разрезанного вдоль кактуса-привоя с целью более эффективного пробуждения боковых ареол и использования привоя в качестве маточника. Естественно, что в случае прививания на продольный срез черенка впоследствии требуется перепрививка привоя на корнесобственный подвой.

При прививке на неукорененный подвой части прививки меняются функциями.

Той концентрации гормонов, в частности гормонов ауксинового ряда, которая имелась в куске стебля кактуса-подвоя явно недостаточно не только для образования корней, но и для формирования каллюсной подушки. В стеблях обоих кактусов имеется определенная концентрация привнесенных от корня цитокининовых гормонов. Концентрация их зависит от вегетационного состояния, в котором находятся растения непосредственно перед прививкой.

Локализуясь в зоне срастания, цитокинины совместно с подошедшими из апикальной зоны ауксинами вызывают интенсивное деление камбиальных и, частично, паренхимных клеток, образование и рост каллюса преимущественно со стороны привоя.

Находясь в комфортных условиях при повышенной влажности субстрата и воздуха, части прививки срастаются, и ауксины получают возможность спуститься к нижнему срезу черенка-подвоя. При достижении в тканях этой зоны концентрации ауксинов около 3 мг/л камбиальные клетки начинают формировать зачатки корней.

Как уже было отмечено в начале этой главы, наиболее оптимально процессы срастания и регенерации тканей проходят при максимальном совмещении камбиальных колец. Также было сказано, что если у подвоя диаметр камбиального кольца больше чем у привоя, то последний несколько сдвигают, добиваясь частичного соединения центральных цилиндров. В практике может случиться, что кактусовод вынужден прививать кактус, у которого камбиальное кольцо значительно больше такового у имеющегося подвоя. Выйти из этого положения можно, предварительно привив между собой несколько подвоев.

Для этого одинаковые по высоте и диаметру кактусы-подвои срезают тангенциально, слегка заходя за апекс, и прививают их попарно. Через десять дней пары срезают аналогичным образом и прививают друг к другу – в результате получается широкий подвой на четырех корнях. При наличии определенных навыков можно прививать и более четырех кактусов-подвоев, но четыре

– наиболее оптимально.

После снятия давящей обвязки привитым подвоям дают отдохнуть и тронуться в рост, а затем производят прививку традиционным способом – камбиальное кольцо у такого объединенного подвоя представляет собой крестообразно расположенные дуги, диаметр его в 3

– 4 раза больше диаметра камбиальных колец первоначальных подвоев.

подвой      укорененная детка

Echinopxis lirhr .

                         стела подвоя

четыре подобранных подвоя

 Echinopsis hybr.

подвои прививают попарно

 после срастания пары прививают вновь

привитые друг к другу подвои помещают в грунт и дают прививке «отдохнуть»

поперечный срез объединенного подвоя

привой  – черенок tnciocucnix conothelos.

стела привоя с большим камбиальным

кольцом и хорошо видными элементами

ксилемы

прививка на объединенный подвой

осуществляется по традиционной

методике

привитое растение через месяц после снятия фиксирующих колец

Фото 410 – 421. Последовательные стадии прививки на объединенный подвой при отсутствии у кактусовода подвоя с необходимым диаметром камбиального кольца.

При прививке на небольшие эхинопсисы, свитые подобным образом, прослеживается аналогия с «прививкой корнем» – эхинопсисы со временем начинают выполнять функцию утраченных корней.

Отдельно хочется остановиться на двух видах специализированных прививок: декоративной прививке и культуре маточников на подвоях.

Первая – ставит целью показать декоративные качества как привоя, так и подвоя. Хотя и здесь бывают исключения. Так привитые кристатные формы больше привлекают внимание, чем цереусовые подвои. То же можно сказать и о дернинах кактусов, активно развивающихся в привитом состоянии.

Цветные формы кактусов, привитые на одиночные подвои, не очень декоративны, но если они привиты группой на боковые побеги кактусов-подвоев – то смотрятся эти прививки очень привлекательно.

Так же декоративно и причудливо выглядят прививки на плоские членики некоторых

Фото426-4П. Ariocarpus bravoanus, привитый на перески-опсис, был разрезан через апекс вдоль. На фотографии справа то же растение через четыре месяца.

Фото428 – 430. Верхняя часть вытянутого ссянеца Discocactusplacentiformis прпшгш на псрескиопсис (428); оставшаяся нижняя часть гипокотиля тоже была привита на перескиопсис (429) и через два месяца образовала побег, отрастающий из центрального цилиндра (430).

опунций. Благодаря эллиптической форме поперечного среза центрального цилиндра прививать можно не только на верхушку подвоя, но и на боковые вырезы и даже в центр стебля.

Культура маточников на подвоях гораздо популярней, чем культура маточников на своих корнях, т.к. привитое растение с удаленной верхушкой, получая обильное питание, интенсивно вегетирует и образует боковые побеги.

В процессе прививки молодых сеянцев порой остается довольно значительная «корневая»

часть гипокотиля, которая при возвращении в субстрат вряд ли образует побег, но в привитом состоянии вероятность этого значительно повышается.

Другой способ получения боковых побегов – разрез привитого кактуса через апекс вдоль, практически до места прививки. В результате подобного разреза происходит разделение апикальной меристемы и после «реабилитационного периода» обе части апикальной меристемы начинают функционировать и образовывать боковые побеги.

При прививке кактусов не стоит говорить о стопроцентной результативности этой операции. Нарушение процессов срастания и регенерации тканей объясняется прежде всего несовпадением скоростей переноса питательных, биологически-активных и гормональных веществ. Зона срастания является серьезной преградой на пути передвижения соков. Первым признаком нарушения процессов срастания частей прививки является образование боковых побегов из верхних ареол подвоя. При их удалении регенерационные процессы возобновляются.

Иногда, после стагнации, у подвоя начинают активизироваться более нижние ареолы, что говорит о недостаточном количестве продуцируемых апексом привоя гормонов ауксинового ряда, т.е. о снижении апикального доминирования. Если боковые побеги не удалять, то со временем происходит перераспределение тока веществ, и привитое растение может быть отторгнуто. При своевременном же удалении боковых побегов торможения ростовых процессов у привоя не наблюдается.

В 1961 году Ю.А.Лукс и Н.Г.Вьюгина в «Ботаническом журнале» описали довольно редкий случай прободения кактуса-привоя побегом, отрастающим от центрального цилиндра подвоя. Причем сам привой находился в активном состоянии и даже сформировал бутон.

Второй признак – это появление придаточных корней у привоя. В некоторых случаях корни

Фото 431. Прививка Ariocarpus scapharostrus на Eriocereus pomanensis – начало отрастания бокового побега из верхней ареолы.

Фото 432. Прививка Disco-cactus boomianus на Myr-tillocactus geometrizans – отрастание бокового побега из нижней ареолы.

Фото 433. Признак непривития или отторжения прививки – образование придаточных корней у привоя (Ariocarpus retusus привитый на Eriocereus pomanensis).

Фото 434 – 435. Прободение побегом подвоя (Trichocereus candicans) тканей привоя (Astrophytum asterias). (по Ю.Лукс и Н.Вьюгиной)

могут проникать в ткани подвоя, но гораздо чаще растут по его поверхности. В подавляющем большинстве случаев появление придаточных корней является признаком полного отторжения частей прививки. Привой целесообразнее укоренить, т.к. перепрививка подобного кактуса, как правило, нерезультативна.

В заключение хочется затронуть вопрос о снятии кактуса-привоя с подвоя и последующего его укоренения.

Если абстрагироваться от немаловажного фактора способности к корневой регенерации у различных видов кактусов, то можно с полной уверенностью сказать, что время укоренения зависит от глубины проникания каллюсной массы подвоя в привой в процессе срастания и последующего восстановления проводящих тканей в зоне срастания, с одной стороны, и подготовленности привитого растения к  укоренению, с другой.

Фото 436 – 439. Иллюстрация снятия с подвоя Parodia andreana способом «травмирования центрального цилиндра»: часть стебля подвоя подрезают и после соответствующего под-сушивания среза стебель обертывают фольгой, куда засыпают легкий субстрат; прививку устанавливают так, чтобы травмированный участок стелы был на теневой стороне растения. Через некоторое время образуются придаточные корни. Привой срезают и первоначально укореняют боком. После благополучного закрепления корней в субстрате черенок выравнивают.

Фото 440. Начальная стадия подготовки Parodia tilcarensis к снятию с прививки методом «перетягивания центрального цилиндра»: на стебель накладывается давящая резиновая повязка, которая фиксируется шерстяной нитью; раз в неделю повязка снимается и накладывается вновь с большим усилием.

Как установлено эмпирическим путем, чем глубже врастают клетки подвоя в привой, тем более длительно идут процессы новообразования корней*. Очевидно, здесь происходит смещение гормональных полей за счет инородных тканей подвоя в привое и большей лабильности клеток камбия по сравнению с остатками каллюсной массы к ауксинам. Немаловажную роль здесь играет АБК, тормозящая синтез РНК и, следовательно, синтез белков.

Наиболее простой способ «снятия с подвоя» – полное отделение, подсушивание и последующее укоренение кактуса, как черенка. Для видов, легко образующих придаточные корни – это приемлемо. Буквально через месяц – полтора кактусовод будет иметь корнесобственное растение. Однако далеко не все растения способны укорениться за такой период времени, порой приходится ждать год и даже более. Так, например, кактусы из таких родов, как Ariocarpus, Roseocactus, Neogomesia**, образовывали придаточные корни после подсушивания в течение 3 – 5 лет (данные В.И.Крачуна). Таким образом, растения просто «потеряли» эти годы. Гораздо целесообразнее подготовить трудноукореняющиеся кактусы (Parodia sp.sp, некоторые Mammillaria, Gymnocalycium, высокодекоративные кактусы из родов Ariocarpus, Roseocactus, Neogomesia, Uebelmannia, Lophophora, Strombocactus и т.п.) к снятию с подвоя.

Такие прививки на некоторое время переводят в режим покоя для повышения содержания легко доступных Сахаров и других углеводов в цитоплазме клеток и увеличения вязкости клеточного сока с целью снижения градиента передвижения гормонов (в частности – ауксинов). Далее:

– обрезают запасающую ткань подвоя и, частично, привоя в месте, планируемом для отторжения, но не затрагивают проводящую ткань и дают срезу подсохнуть, огрубеть и налиться. На это требуется срок от двух до четырех недель в зависимости от состояния подвоя;

– затем начинают травмировать стелу. Подрезав около 3/4 камбиального кольца, прививке дают «отдохнуть» 7 – 10 дней. В результате подрезания центрального цилиндра добиваются ограничения поступления питательных веществ в привитое растение. Стремясь пополнить недостаток питания, кактус либо увеличивает массу проводящих тканей ксилемы, либо образует придаточные корни, т.к. отток ауксинов из апекса в корень затруднен. Причем ввиду того, что ауксины транспортируются из апекса по теневой стороне стебля, одностороннее освещение прививки и расположение ее так, чтобы ауксины задерживались в травмированном месте стелы, приведет к более быстрому закладыванию зачатков корней.

* ярким доказательством этого факта является плохая укореняемость кактусов, выращенных в привитом состоянии на перескиопсисах.

** в современных системах семейства Cactaceae эти три рода объединены в один род – Ariocarpus

 

Чаще всего процессы разрастания сегмента стелы и образования придаточных корней проходят параллельно, и кактусоводу остается только окончательно отделить привой, подсушив срез, посадить его в легкий субстрат и поместить в мягкие условия содержания для адаптации к новой среде культивирования.

Привитые пародии и маммиллярии неплохо укореняются, если наложить тугой резиновый жгут на место будущего среза, обязательно на стебле привоя. Примерно раз в неделю жгут разматывают и наматывают снова с большим усилием. При этом клетки запасающей ткани вначале сжимаются до стелы, в дальнейшем сжимаются и травмируются ткани центрального цилиндра. Площадь среза у подготовленного таким образом к снятию с прививки кактуса будет минимальной.

Образование придаточных корней и при способе «механического травмирования центрального цилиндра» и при способе «перетягивания стебля» пойдет успешнее, если кактусовод «поднесет» субстрат к месту корнеобразования. Наиболее просто это сделать, обмотав стебель куском алюминиевой фольги и обжав ее нижнюю часть. В образовавшуюся полость засыпают субстрат, который периодически увлажняют. Подвой же не поливают.

Лучше переносят снятие с подвоя молодые растения. Укоренение и последующее содержание взрослых кактусов требует повышенного внимания. Субстрат для вновь укорененных растений следует составлять очень легким. Плодородный слой помещают в нижнюю часть горшка или плошки, а вновь образованные корни располагают в крупном песке. Полив целесообразнее производить снизу, что стимулирует рост корней в сторону плодородного слоя.

Микроразмножение

Микроразмножение кактусов – сравнительно новый способ их вегетативного размножения, хотя в растениеводческой практике размножение растительных клеток in vitro (в стекле) довольно широко применяется. Для обозначения этого метода в зарубежной и отчасти в отечественной литературе используется термин «микропропагация» (micropropagation), что полностью соответствует «микроразмножению», а иногда и термин «клонирование».

Для любопытного читателя нелишним будет небольшой исторический экскурс.

В конце девятнадцатого века немецкие ботаники Фехтинг и Рехингер проводили опыты по выращиванию небольших кусочков растительных тканей. Однако уровень знаний физиологии растительной клетки в те времена был довольно низок, и их опыты окончились неудачей. То же можно сказать и об экспериментах Габерландта в 1902 году.

Далее в истории микроразмножения наступает почти тридцатилетний перерыв, связанный с поиском объектов, искусственных сред и условий для роста изолированных тканей и клеток.

В 1932 – 1934 годах французскому физиологу Роже Готре и американскому – Филиппу Уайту удалось добиться эффективного роста и развития клеток, взятых из корневой меристемы, камбия древесных растений, а затем клеток из запасающей паренхимы моркови и петрушки. Именно оттуда тянется узенькая тропиночка к современному клонированию суккулснтных растений.

Разработка и совершенствование искусственных питательных сред, использование в качестве доноров для изолированных клеток и тканей все большего количества видов, разработка условий консервирования и длительного хранения изолированных тканевых и клеточных культур – основные вехи экспериментаторской работы ученых в 40 – 50-х годах. Сегодня насчитывается более 400 видов растений, с которыми были проведены подобные опыты.

В настоящее время разработаны методики по выращиванию in vitro культуры тканей на агаровой среде в виде каллюсной массы или в жидкой среде в виде взвеси из одиночных клеток или кусочков ткани.

Культура изолированных органов, тканей и клеток для клонального размножения растений, оздоровления растительного материала от вирусной инфекции, регенерация растений из каллюсных культур имеют широкое практическое применение. В декоративном растениеводстве огромная масса работ проведена по микроразмножению орхидей, сенполий, глоксиний, немало удачных экспериментов проведено над суккулентными растениями и над кактусами, в частности.

Цель этой главы – не только познакомить читателя с методиками клонирования, но и дать рекомендации по культуре изолированных тканей кактусов на агаровой среде применительно к осуществлению этого метода в домашних условиях. При изложении материала автор будет опираться как на результаты своих опытов, так и на работы Р.Г.Бутенко, Н.В.Катаевой, З.Б.Шаминой, В.В.Уманцевой, J.L.Johnson, E.R.Emio, R.Starling, J.R.Ault, W.J.Blackmon, P.W.Clayton, J.F. Hubstenberger, G.C.Phillips и других. С позволения редакции журнала Bradleya автор приводит фотографии из работы W.Stuppy & W.Nagl «Regeneration and propagation of'Ariocarpus retusus Sclieidw. (Cactaceae) via somatic embryogenesis», а также фотографии, предоставленные голландским физиологом R.Wellens специально для иллюстрации этой главы.

В главе, посвященной прививке кактусов, говорилось, что при срастании частей прививки основную роль играет камбий – вторичная меристема. Клетки запасающей и сердцевинной тканей не срастаются, а скорее, склеиваются. В большинстве случаев это так. Однако нельзя не отметить, что открытые участки запасающей ткани, неизбежно образующиеся при прививке, как правило, не высыхают*. На травмированной поверхности вырастает тонкий слой мелких клеток, способных к активному делению, т.е. меристематических, закрывающих собой раневую поверхность и способствующих регенерации поврежденных тканей. Таким образом, хотя и с разной степенью

* ес.'щ подвой и.'ш привой во время свития находится в состоянии стагнации  – – не исключено высыхание, пирон па чо.гынгю г.п'онну, паренхимных тканей и даж:е полное высыхание одной U't частей прививки и:ш всего комплекса.

интенсивности, каллюсная меристема образуется из любой ткани. Исключением являются разве что ткани колючек, опушения и механические ткани в чистом виде – т.е. те ткани, клетки которых в достаточной степени лигнифицированы и не способны к делению.

Каллюсные культуры получают из разных органов и тканей: стеблей, корней, цветоносов, частей цветка, зародышей и его частей, у имеющих листья растений – из листьев .

Применительно к клонированию кактусов in vitro в домашних условиях мы будем говорить лишь о методах культуры тканей для клонального размножения растений.

Результативность этих методов необычайна. Так при посеве кактусов семенами даже при 100%-й всхожести можно ожидать не более 2% «двоен». При вегетативном размножении от маточного растения теоретически можно получить число боковых побегов, соответствующее количеству ареол – практически же – гораздо меньше. При микроразмножении от одного кусочка каллюсной меристемы, содержащей даже 10 – 100 клеток, можно получить неограниченное количество растений. Например от одного зародыша (Parodia elegans) автору удалось получить 38 растений. Естественно, что генный набор у подобных растений идентичен, и генеративное размножение их путем перекрестного опыления между одноклоновыми экземплярами представляется сомнительным, но имеется неоспоримая возможность сохранения неординарных фенотипических признаков какой-либо высокодекоративной формы.

Суть методов микроразмножения следующая: от растения берут часть ткани и после соответствующей антисептической обработки помещают на стерильную искусственную среду. В результате активного роста раневой меристемы образуется каллюсная масса клеток, из которой, в свою очередь, формируются побеги.

Как уже было сказано выше, практически любая ткань может формировать каллюсную меристему на искусственной питательной среде. Однако применительно к микропропагации кактусов в подавляющем большинстве случаев берут либо меристематические ткани, либо целые зародыши. По типу донорской ткани, используемой для клонирования кактусов, методы можно условно разделить на две группы:

1. способ микроразмножения «меристематической тканью»;

2. способ микроразмножения «меристематическими эмбрионами».

Неоднократно проводились опыты по использованию тканей семени (эндосперма), однако в микроразмножении кактусов, особенно в домашних условиях, они не применяются. Как правило, не используют с этой целью ткани завязи и других частей цветка.

Перед более конкретным рассмотрением способов клонирования кактусов необходимо ознакомиться с оборудованием, инструментами, методиками приготовления и использования искусственных питательных сред.

Главным залогом успеха в подобных опытах является чистота всего оборудования. Поэтому в помещении, где будут проводиться подобные работы, необходимо произвести влажную уборку.

Оборудование

В качестве основного растворителя для приготовления питательных сред можно использовать прокипяченную дважды с интервалом в сутки воду, но лучше применять дистиллированную воду, которую можно приобрести в аптеке или приготовить самостоятельно с помощью дистилляторов несложной конструкции.

Кактусоводу также потребуется кварцевая или увиолевая лампа. При работе с аппаратурой,

Рис. 90. Простейший дистиллятор на основе двух стеклянных банок (по А.М.Шитову).

1. паровичок

2. водяная баня

3. электронагреватель

4. пароотводная трубка

5. термометр

6. водопроводная вода

7. трубопровод

8. холодильник

9. пароприемная трубка

10. перепускная трубка

11. подставка-тренога

12. охладитель – холодная вода

13. раковина

Рис. 91. Дистиллятор на   основе скороварки и водяного холодильника (по А.М.Шитову).

1. паровичок-скороварка

2. трубопровод

3. термометр

4. каплеуловитель (можно не применять)

5. водопроводная вода

6. холодильник

7. приток холодной воды

8. отток воды из холодильника

9. газовая горелка

10. плита

11. выпускная трубка

12. приемный стакан

13. штатив

испускающей жесткие ультрафиолетовые лучи, следует соблюдать соответствующую технику безопасности – не находиться длительное время в комнате, где работают лампы. При необходимости пользоваться защитными очками.

Для места проведения работ кактусоводу потребуется соорудить специальный бокс.

Бокс изготавливают наподобие аквариума из алюминиевого уголка и оргстекла, т.к. обыкновенное стекло не пропускает ультрафиолетовые лучи. Наиболее оптимальные размеры бокса: длина 80 см, ширина 50 см, высота 50 см. Боковую стенку делают откидной и окантовывают резиновым или пенополиуретановым уплотнителем. В передней стенке делают два отверстия диаметром около 12 см – под руки. К краям отверстия приклеивают раструбом перчатки из прочной резины. Длина перчаток должна обеспечивать свободный доступ руки в любой угол бокса, поэтому в некоторых случаях раструб придется нарастить, приклеив резиновым клеем раструб от других перчаток. Все швы в боксе герметизируют.

Перед применением бокс тщательно моют и высушивают. Его устанавливают на прочную нешатающуюся опору и облучают кварцевыми лампами с короткого расстояния не менее 30 минут.

Рис. 92. Самодельный бокс для работ с билогическим материалом. Изготавливается из оргстекла и алюминиевых уголков. Боковая стенка делается откидной и оснащается уплотнителем. Резиновые перчатки из толстой резины вклеиваются раструбами в специально проделанные отверстия.

Нелишним будет и расположение лампы внутри бокса и облучение его внутренней поверхности.

При более объемных работах по микроразмножению размеры бокса можно увеличить В оптимальном варианте увиолевую лампу можно установить прямо в боксе, выведя провода пускорегулирующей аппаратуры за пределы бокса. В длинном боксе целесообразно предусмотреть еще пару отверстий с перчатками.

Непосредственно за 1 час до работы лампы включают на 30 минут.

Инструмент, посуда и материалы

В качестве посуды используют стеклянные или одноразовые пластиковые пробирки, чашки Петри или банки. Стеклянную посуду предварительно моют, ополаскивают 10 – 15 раз водопроводной или 3 – 4 раза дважды прокипяченой водой, высушивают, оборачивают чистой писчей бумагой и помещают в сушильный шкаф, а в домашних условиях – в духовой шкаф Стеклянную посуду прогревают при температуре + 120 – +140 °С не менее двух часов После прогрева посуду хранят, не разворачивая бумагу.

Одноразовая посуда не требует предварительной обработки в случае целостности упаковки Некоторые пластики выдерживают нагрев более +100 °С, поэтому подобную посуду можно кипятить. В противном случае, одноразовую посуду, находящуюся в поврежденной упаковке, в домашних условиях использовать нельзя.

Рис. 93. Посуда, применяемая для микроразмножения:

1. банка с крышкой

2. чашка Петри

3. пробирки в штативе

В качестве инструмента лучше всего применять остро заточенные медицинские скальпели. Режущий инструмент заворачивают в марлю, помещают в емкость с водой и кипятят не менее 30 минут либо прогревают, завернув в бумагу, в духовом шкафу аналогично стеклянной посуде.

В настоящее время для микроразмножения наиболее часто применяются следующие питательные смеси (таблица составлена В.Урманцевой):

Компоненты среды