Текст книги "Полный справочник медицинской аппаратуры"

Автор книги: авторов Коллектив

сообщить о нарушении

Текущая страница: 40 (всего у книги 41 страниц)

ЧАСТЬ V
СТЕРИЛИЗАЦИОННОЕ ОБОРУДОВАНИЕ

Стерилизация – это процесс, направленный на уничтожение микроорганизмов, так как наибольшую стабильность и опасность во внешней среде представляют споры некоторых патогенных бактерий. Поэтому стерилизующие устройства и химические вещества должны обладать бактерицидным, спороцидным и ви-рулицидным эффектами. Все действия, направленные на стерилизацию, должны проводиться на основании МУ 287–113 от 30 декабря 1998 г. Стерилизации должны подвергаться все медицинские и косметические изделия, которые соприкасались с поверхностью раны, контактировали с кровью и другими биологическими жидкостями или препаратами для инъекций, включая медицинские инструменты, которые в процессе эксплуатации соприкасались со слизистой оболочкой и могли вызвать ее повреждение. Стерилизация включает в себя три основных звена, таких как дезинфекция, предстерилизационная очистка и собственно стерилизация. Также можно выделить две подгруппы: контроль дезинфекции и предстерилизационной очистки и контроль стерилизации. Стерилизация является наиболее важным звеном асептики. Асептика – это система мероприятий, направленных на предотвращение попадания патогенных микроорганизмов в рану, ткани, органы, полости тела больного при хирургических вмешательствах, перевязках, эндоскопических и других лечебных и диагностических манипуляциях. Асептика тесно связана с антисептикой.

Приготовление реактивов.

Техника постановки проб для оценки качества

предстерилизационной обработки

Азопирамовая проба

На 1 л раствора азопирама отвешивают 100 г амидопирина – 1,5 г соляно-кислого анилина. Вещества смешивают в сухой по суде и заливают 95 %-ным этиловым спиртом до объема 1 л. Смесь тщательно перемешивают до полного растворения ингредиентов.

Готовый раствор может храниться в плотно закрытом флаконе при температуре +4 °C (в холодильнике) 2 месяца, в темноте при комнатной температуре – не более 1 месяца. Умеренное пожелтение реактива в процессе хранения без выпадения осадка не снижает его рабочих качеств.

Непосредственно перед постановкой пробы готовят рабочий раствор, смешивая равные объемные количества азопирама и 3 %-ной перекиси водорода.

Рабочий раствор азопирама должен быть использован в течение 1–2 ч. При более длительном стоянии может появиться спонтанное розовое окрашивание реактива. При температуре выше 25 °C рабочий раствор розовеет быстрее, поэтому его рекомендуется использовать в течение 30–40 мин. Нельзя подвергать проверке горячие инструменты, а также держать рабочий раствор на ярком свету или при повышенной температуре (вблизи нагревательных приборов и т. д.).

Пригодность рабочего раствора азопирама проверяют путем нанесения 2–3 капель на кровяное пятно. Если не позже чем через 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее затем в сиреневый цвет, реактив пригоден к использованию; если окрашивание в течение 1 мин не появляется, реактивом пользоваться нельзя.

Амидопириновая проба

Смешивают равные количества 5 %-ного спиртового раствора амидопирина, 30 %-ного раствора уксусной кислоты и 3 %-ной перекиси водорода.

Реактив готовят перед использованием.

5%-ный спиртовой раствор амидопирина готовят на 95 %-ном этиловом спирте. Данный раствор может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

30 %-ный раствор уксусной кислоты и 3 %-ный раствор перекиси водорода готовят на дистиллированной воде.

Фенолфталеиновая проба

Готовят 1 %-ный раствор фенолфталеина. Спиртовой раствор фенолфталеина может храниться во флаконе с притертой пробкой в холодильнике в течение 1 месяца.

Методика постановки проб

Контролируемое изделие протирают тампоном, смоченным реактивом, или 2–3 капли реактива пипеткой наносят на изделие.

В шприц вводят 3–4 капли рабочего раствора и несколько раз продвигают поршнем, для того чтобы смочить реактивом внутреннюю поверхность шприца, особенно места соединения стекла с металлом, где чаще всего остается кровь. Реактив в шприце оставляют на 0,5–1,0 мин, после чего вытесняют на марлевую салфетку.

При проверке качества очистки игл реактив набирают в чистый, не имеющий следов коррозии шприц и последовательно, меняя иглы, пропускают реактив через них, выдавливая на марлевую салфетку 3–4 капли.

При проверке качества очистки катетеров и других полых изделий реактив вводят внутрь изделия с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют внутри изделия на 0,5–1,0 мин, после чего его сливают на марлевую салфетку. Количество реактива, вносимого внутрь изделия, зависит от величины изделия.

При постановке азопирамовой пробы при наличии следов крови немедленно или в течение 1 мин появляется вначале фиолетовое, затем быстро, в течение нескольких секунд, переходящее в розово-сиреневое или буроватое окрашивание реактива.

Методы стерилизации изделий медицинского назначенияСтерилизация является третьим этапом обработки изделий медицинского назначения после дезинфекции и предстерилиза-ционной очистки. Существуют физические и химические методы стерилизации. Физический метод подразумевает применение температурных (пара под давлением, сухого жара), радиационных (частиц гамма-излучения) факторов для стерилизации. Химический метод осуществляется за счет применения газообразных и жидких химических препаратов. Соответственно стерилизация делится на холодную (при температуре ниже 100 °C) и горячую (выше 100 °C). К первой относятся радиационный и химический способы, а ко второй – термический.

Классификация устройств для стерилизацииОсновное оборудование. 1. Автоклавы:

1) шкафные и цилиндрические (вертикальные – загружают и выгружают изделия сверху; горизонтальные – непроходные (однодверные) и проходные (двухдверные));

2) стационарные и автоклавы для станций ЦСО;

3) электронный (оснащенный полной автоматизацией всего цикла стерилизации) и механический;

4) автоматический, полуавтоматический и ручной;

5) малые (вместительностью от 5 до 40 л);

6) средние (вместительностью от 40 до 350 л);

7) большие (вместительностью от 350 до 1000 л);

8) сверхбольшие (вместительностью от 1000 л и выше – автоклавы для станций ЦСО).

2. Сухожаровые шкафы:

1) круглые и прямоугольные;

2) вертикальные и горизонтальные (непроходные (однодверные) и проходные (двухдверные));

3) электронный (с полной автоматизацией всего цикла стерилизации) и механический;

4) автоматический, полуавтоматический и ручной.

3. Ультрафиолетовые стерилизаторы.

4. Пароформалиновые камеры.

5. Гласперленовые стерилизаторы.

Дополнительное оборудование.

1. Дестиляторы и деминерализаторы воды.

2. Упаковочные машинки.

3. Биксы, контейнеры для инструментов.

Процесс дезинфекции должен проводиться под контролем проб на скрытую кровь и наличие моющего средства, а непосредственно стерилизация контролируется препаратами мочевины и специальными термоиндикаторными полосками. Это позволяет добиться высокого качества данных мероприятий и обеспечить полное уничтожение микроорганизмов и их спор.

Физический метод стерилизации

Паровой способ

Автоклав – герметичный аппарат для проведения многих физико-химических процессов при нагреве и повышенном давлении (что увеличивает скорость процессов), а также для стерилизации медицинских инструментов и перевязочных материалов. Стерилизующим агентом при данном методе стерилизации выступает водяной насыщенный пар под давлением. Существуют два режима: обычный и щадящий.

1. Обычный: температура – 132 ± 2 °C, давление – 2 атм, время выдержки – 20 мин.

2. Щадящий: температура – 120 ± 2 °C, давление – 1,1 атм, время выдержки – 45 мин.

Водяной пар под избыточным давлением способен коагулировать белок внутри микробной клетки, что приводит к ее гибели. В автоклавах имеется резервуар для воды, которая должна быть дистиллированной и получаться в специальных дистилляторах.

Автоклавы применяются в тех случаях, когда использование сухого жара или химических веществ становится недопустимым. В настоящее время существует большое количество различных видов стерилизационного оборудования и фирм, которые их производят, что обеспечивает оптимально удобное для медицинского персонала распределение времени и сил.

В автоклавах стерилизуют:

1) общие и специализированные хирургические инструменты;

2) части медицинских устройств и аппаратов, которые изготовлены из металлов, устойчивых к коррозии, а также стеклянные части;

3) многоразовые шприцы с пометкой 200 °C;

4) хирургическое белье, перевязочный и шовный материал;

5) резиновые изделия (перчатки, трубки, катетеры, зонды и т. д.), изделия из латекса (резиновые перчатки предварительно осыпаются тальком по всей поверхности для предотвращения склеивания, а для продления срока службы изделий из латекса их стерилизуют при температуре, не превышающей 120–122 °C);

6) лигатурный шовный материал (хирургические шелковые и капроновые крученые нити, шнуры хирургические полиэфирные). Весь шовный материал предварительно скручивают в косички.

Основными предприятиями на рынке стерилизационного оборудования являются фирмы MELAG – Германия (автоклавы Cli-niklav 25, Euroklav 23 S / 23 V-S, MELAquick 12, MELAtronic 15 / 17 / 23, Vacuklav 24-B / 24-B/L и другие), KSG STERILISATOREN – Германия, SciCan – Канада, Indicator Tape, Steriking AC (Финляндия), Autoclave Indicator Tape (США), ИС-120.МС-132 (Рязань) и множество других фирм. Существуют также электронные автоклавы, у которых имеется функция программирования, а весь цикл стерилизации после закрытия камеры управляется компьютерным процессором. Некоторые новаторские автоклавы могут подключаться к персональному компьютеру клиники, благодаря чему могут фиксироваться все действия, производимые с аппаратом (время закрытия и открытия, режим стерилизации, фамилия медсестры и другая необходимая информация). Возможность программирования современных стерилизаторов расширяет диапазон обрабатываемых изделий, давая возможность выбирать необходимые индивидуальные режимы для отдельных групп изделий. Некоторые из современных стерилизаторов имеют режим дополнительной сушки, при которой после стерилизации камера нагревается до определенной температуры и излишняя влага удаляется.

Контрольпаровой стерилизации химическими индикаторами В соответствии с ГОСТом Р ИСО 13683-2000 «Требования к валидации и текущему контролю» паровая стерилизация требует периодического контроля, который проводится один раз в неделю и основывается на способности аппарата устранять воздух из камеры. В гравитационных стерилизаторах используют Тест-ИХ, а в форвакуумных стерилизаторах – Боуи-Дик-тест. Текущий контроль осуществляется в каждом цикле стерилизации и включает в себя три вида контроля.

1. Контроль потока изделий медицинского назначения для предотвращения смешивания стерильных изделий с нестерильными. На все упаковки фиксируют индикаторы, которые используют в любых режимах стерилизации.

2. Контроль условий стерилизации внутри упаковок и изделий – используются внутренние индикаторы процесса. Благодаря им персонал медицинских учреждений косвенно определяет стерильность изделий. Также не реже одного раза в месяц необходимо проводить бактериологическое исследование путем посева смывов со стерилизованных изделий.

В гравитационных стерилизаторах экспозиция прогрева трудно стерилизуемых изделий в режиме 120 + 2 °C, 45 мин может достигать 25 мин, т. е. после достижения установленной температуры внутри стерилизатора требуется еще 25 мин для прогрева изделия.

Внутренние индикаторы помещают в наиболее труднодоступные для пара зоны. Индикаторы закладывают в процессе упаковки изделий. При применении разовых упаковочных материалов внутренние индикаторы помещают в каждую упаковку. В стери-лизационные коробки с пористыми изделиями и изделиями с полостями при видовой и целенаправленной укладке закладывают не менее 3 индикаторов и 4 индикатора – при секторной укладке (по 1 в каждый сектор); в биксы с непористыми массивными изделиями достаточно заложить 1 индикатор.

Представители разрешенных внутренних индикаторов:

1) для гравитационных стерилизаторов:

а) Стеритест-П-120/45-02;

б) Стеритест-П-132/20-02 (НПФ «Винар»);

2) для форвакуумных:

а) Интест-П-121/20;

б) Интест-П-126/10;

в) Интест-П-134/5 (НПФ «Винар»).

3. Для наружного контроля используются индикаторы с контрольными значениями достижения конечного состояния, соответствующими минимально допустимым условиям. Результаты контроля становятся известными сразу после завершения цикла стерилизации в стерилизационном отделении. Персонал, эксплуатирующий паровые стерилизаторы, проводит «наружный» контроль, закладывая химические индикаторы в камеру стерилизатора снаружи упаковок в контрольные точки. Контрольные точки должны быть расположены в холодных зонах камеры, определяемых по результатам валидации (тестирования) стерилизатора. При отсутствии валидации для повышения надежности контроля индикаторы закладывают во все контрольные точки в соответствии с методическими указаниями. В качестве наружных индикаторов для гравитационных паровых стерилизаторов Минздравом РФ разрешены к использованию следующие индикаторы:

1) ИС-120;

2) ИС-132;

3) МедИС-120/45;

4) МедИС-126/30;

5) МедИС-132/20;

6) Стериконт-П-120/45;

7) Стериконт-П-132/20 (НПФ «Винар»);

8) Интест-П-121/20;

9) Интест-П-126/10;

10) Интест-П-134/5 (НПФ «Винар»).

Таким образом, для получения объективной информации о качестве стерилизации необходимо использовать комплекс физических и биологических методов.

Воздушный способ стерилизации

Данный способ менее эффективен в отличие от парового, потому что требует более высоких температур, следовательно, уменьшается диапазон медицинских изделий, которые можно стерилизовать.

Стерилизацию воздушным способом проводят двумя способами:

1) +160 °C, 150 мин;

2) +180 °C, 60 мин.

Изделия предварительно заворачивают в упаковочные материалы. После стерилизации изделия медицинского назначения хранятся на стерильных столах, в асептических условиях.

Воздушным способом стерилизуют:

1) хирургические, гинекологические и стоматологические инструменты;

2) металлические, стеклянные и силиконовые изделия;

3) многоразовые шприцы с пометкой 200 °C;

4) стеклянные пипетки, капилляры, меланжеры;

5) иглы для акупунктуры, гортанные зеркала, зубные боры (+160 °C).

Качественная стерилизация сухим жаром определяется равномерным распределением горячего воздуха внутри камеры, что достигается благодаря правильной укладке инструментов и материалов.

Правила укладки:

1) инструменты следует укладывать горизонтально и поперек полок;

2) изделия должны равномерно лежать на поверхности кассет, не накладываясь друг на друга;

3) нельзя перекрывать продувочные окна;

4) большие инструменты надо класть на верхнюю полку, чтобы они не препятствовали потоку горячего воздуха;

5) загрузку инструментов в воздушные стерилизаторы проводят при температуре камеры 40–50 °C;

6) время фиксируется в зависимости от температуры с момента полного нагревания камеры.

Для стерилизации изделий медицинского назначения нельзя использовать сушильные шкафы, так как они имеют приточно-вытяжную вентиляцию, что может привести к обсеменению изделий.

Инструменты, которые стерилизовались без упаковки, должны использоваться в течение смены (до 6 ч).

Для упаковки инструментария перед стерилизацией существуют различные виды упаковочной бумаги, в частности пергамент, высокопрочная и крепированная бумага. Некоторые из упаковочных материалов используются несколько раз. В последние годы очень широкое распространение в России получили крафт-па-кеты, которые герметизируются перед стерилизацией фальцовочным (запечатывающим) устройством. Это очень удобный метод, особенно в тех случаях, когда постоянно используются разные инструменты, так как каждое изделие можно упаковать отдельно. На пакетах обязательно отмечаются дата стерилизации, отделение и ставится подпись медсестры.

Стерилизация ионизирующим излучением

В настоящее время все чаще применяют данный способ стерилизации. Стерилизующим агентом при этом методе является гамма-излучение. Оно представляет собой ускоренные электроны.

Этим методом стерилизуют:

1) хирургические инструменты;

2) перевязочный материал;

3) некоторые лекарственные препараты, сыворотки и др. Механизм действия гамма-излучения: излучение влияет на обменные процессы микроорганизмов, а инфракрасное излучение вместе с высокочастотными колебаниями оказывает бактерицидное действие за счет образующегося тепла.

Факторы, снижающие чувствительность микроорганизмов к ионизирующему излучению:

1) влага;

2) кислород;

3) наличие сульфгидрильных групп;

4) температура;

5) рН среды и др.

Преимущества ионизирующего излучения перед тепловой стерилизацией:

1) при стерилизации температура стерилизующего объекта поднимается незначительно, поэтому этот способ называют холодной стерилизацией;

2) для стерилизации ионизирующим излучением существуют специальные установки (гамма-установка и ускорители электронов), где материалы стерилизуют в упакованном виде;

3) стерилизующая доза зависит как от материала, так и от количества микроорганизмов и их устойчивости в облучаемом материале, что позволяет индивидуально выбирать режим стерилизации (для сильно обсемененного материала увеличивают дозу облучения).

Ионизирующим излучением стерилизуют:

1) медицинские инструменты (шприцы, иглы, катетеры);

2) перевязочные материалы;

3) медицинские изделия одноразового использования (системы для переливания крови, акушерские комплекты). Стерилизованные и упакованные в герметичные пакеты изделия сохраняют свою стерильность несколько лет.

Гласперленовые (шариковые) стерилизаторы

Данный вид стерилизаторов является достаточно новаторским и эффективным, особенно в тех ситуациях, когда врачу необходимо быстро и качественно простерилизовать инструменты. Стерилизация осуществляется физическими факторами – стеклянными шариками, которые нагреваются до температуры 190–250 °C.

Этот метод стерилизации нашел широкое применение в стоматологии, где обработке подвергаются зубные боры, алмазные головки, дрильборы, эндодонтический инструментарий (корневые иглы, файлы, римеры, пульпэкстракторы, каналонаполнители и др.), а также рабочие части гладилок, экскаваторов, зеркал и зондов. Экспозиция зависит от размера инструмента, и ее границы колеблются в пределах от 20 до 150 с. Инструменты не упаковывают, поэтому они должны использоваться сразу после стерилизации.

Биксы – металлические емкости с крышкой для стерилизации. Биксы бывают квадратными и круглыми по форме, большими, средними или малыми по размеру, с фильтром или без него. Фильтрующим материалом в биксах является лавсан. Его фильтрующая способность составляет около 99 %. В стенках бикса имеются отверстия. Во время стерилизации они открыты, а после нее закрываются специальным поясом.

Химический метод стерилизации

Метод химической стерилизации основан на использовании химических веществ в двух физических состояниях: газообразном и жидком (в виде растворов). При газовом способе применяются специальные газовые стерилизаторы с различными химическими веществами (смесью этилена и бромистого метила – 1: 2,5, окисью этилена, парами формальдегида в этиловом спирте, озоном). Эти химические соединения обладают спороцидным действием. При использовании жидких стерилизующих веществ изделия медицинского назначения полностью погружают в них.

Газовый способ стерилизации

Положительным моментом в методе газовой стерилизации является то, что она осуществляется в условиях сравнительно низких температур (от 20 до 85 °C), а отрицательным – то, что изделия после стерилизации подвергаются проветриванию в течение 21 суток. Срок проветривания определяется материалом, а также сроком предполагаемого контакта с тканями человека.

Этот метод стерилизации применяют в тех случаях, когда использование высоких температур не представляется возможным.

Стерилизуемое оборудование:

1) инструменты с зеркальными поверхностями;

2) оптическое и радиоэлектронное оборудование;

3) хирургические режущие и колющие инструменты;

4) хирургический шовный материал, в частности кетгут;

5) изделия из пластмасс, не выдерживающие стерилизацию при высоких температурах (зонды, катетеры).

Химические вещества, применяемые для газовой стерилизации

Окись этилена – это бесцветный газ, который в 1,5 раза тяжелее воздуха. При снижении температуры среды и повышении ее парциального давления он переходит в бесцветную прозрачную жидкость. Она растворяет резину, каучук и некоторые пластмассы. Большим плюсом окиси этилена является то, что в газообразном состоянии она не вызывает коррозии металлов, нарушения целостности изделий из кожи, шерсти, пластмассы, бумаги и резины.

Внимание! В смеси с воздухом окись этилена является сильной взрывоопасной субстанцией! Эффекты:

1) бактерицидный;

2) спороцидный;

3) вирулецидный.

Правила стерилизации предметов газовым способомСтерилизуемые предметы должны быть предварительно разобраны (если это возможно), обработаны моющими препаратами и высушены при комнатной температуре. Из каналов и труднодоступных мест изделий влага удаляется с помощью специального вакуумного устройства или водоструйного насоса. Также можно использовать чистую салфетку для устранения влаги. Далее изделия необходимо поместить в пакеты (обязательно двухслойные) из полиэтилена или бумаги, края пакетов следует склеить утюгом.

Стерилизатор заполняют упакованными стерилизуемыми объектами на 2/3 его объема. Фиксируют время начала стерилизации в журнале.

Для удаления газа из упаковки изделия должны находиться в вытяжном шкафу около 5 ч. Стерильные упакованные изделия имеют срок хранения около 5 лет. Перед использованием изделия медицинского назначения должны находиться в проветриваемом помещении некоторое время. Сроки проветривания:

1) стеклянные и металлические предметы – 1 сутки;

2) изделия, длительно (свыше 30 мин) контактирующие с живыми тканями, – 14 суток;

3) полимерные металлические изделия, мало (до 30 мин) контактирующие с кровью, слизистыми оболочками, тканями, – 5– 13 суток;

4) полимерные, длительно контактирующие с биологическими тканями материалы, используемые в детской практике, – 21 сутки.

Некоторые изделия, простерилизованные парами раствора формальдегида, требуют дегазации, которая проводится в течение двух суток в комнатных условиях. К ним относятся изделия из пластмасс и резины, контактирующих с кровью.

Но в то же время полимерные (резина, пластмасса), металлические и стеклянные изделия, которые не контактировали с кровью, дегазации не требуют.

Также существует неплохой метод стерилизации озоном с помощью аппарата СО-01-С-ПБ. Данным методом стерилизуют простые изделия: скальпели, пинцеты, зеркала, шпатели, боры и подобные изделия. Инструменты не упаковывают и после стерилизации сразу используют.

Стерилизация растворами химических препаратовДанный метод является дополнительным, так как он менее эффективен по сравнению с предыдущими. Его используют тогда, когда нет возможности применить температурные методы. Основной недостаток заключается в том, что инструменты стерилизуются без упаковки, поэтому должны быть использованы сразу же после обработки.

После стерилизации изделия должны быть промыты. С этой целью используют воду или 0,9 %-ный раствор хлорида натрия.

Несоблюдение правил асептики может вызвать вторичное обсеменение микроорганизмами простерилизованных изделий. Основными положительными моментами данного метода являются следующие:

1) возможность стерилизовать термически неустойчивые предметы, некоторые хирургические инструменты из полимеров, инструменты с гибким эндоскопом;

2) возможность химической стерилизации, когда особенности материалов изделий не позволяют использовать другие способы;

3) доступность.

При стерилизации растворами химических средств используют только стерильные емкости из стекла, металлов, термостойких пластмасс или покрытые эмалью. Изделия, подлежащие стерилизации, должны быть сухими, чтобы не нарушить концентрации стерилизующего раствора. Их свободно, не накладывая друга на друга, раскладывают в емкости и расправляют, полностью погружая в раствор. Длинные изделия укладывают по спирали, разъемные стерилизуют в разобранном виде, каналы и полости наполняют раствором.

Извлечение из раствора и дальнейшая обработка должны проводиться строго по правилам асептики: изделия извлекают из раствора стерильным пинцетом, удаляют раствор из каналов и полостей, а затем промывают в стерильной жидкости. При каждом переносе изделий из одной емкости в другую заполнение и освобождение их каналов и полостей свежей жидкостью осуществляют с помощью стерильного шприца или другого приспособления. Затем изделия переносят в стерильную стерилизационную коробку с крышкой, выложенную стерильной простыней (срок сохранения стерильности – 3 суток), или сразу используют по назначению.

Контроль стерилизации

Контроль стерилизации предусматривает проверку параметров режимов стерилизации и оценку ее эффективности. Контроль параметров режимов стерилизации проводят физическим и химическим методами.

Эффективность стерилизации оценивают на основании результатов бактериологических исследований, проводимых с использованием биотестов, и контроля стерильности подвергнутых стерилизации изделий.

Контроль работы стерилизаторов

Контроль работы паровых и воздушных стерилизаторов подразделяют на плановый контроль, самоконтроль и контроль по показаниям, который проводят при получении неудовлетворительных результатов в ходе контроля стерильности ИМН, физического, химического и бактериологического контроля. Персонал ЛПУ осуществляет самоконтроль работы стерилизаторов при каждой загрузке аппарата с помощью физического и химического методов. Специалисты санитарно-эпидемиологических учреждений проводят контроль работы стерилизаторов после монтажа и ремонта, плановый контроль (не реже 1 раза в квартал), а также контроль по показаниям при обнаружении неудовлетворительных результатов контроля стерильности ИМН.

Физический и химический контроль

Физический и химический методы служат для оперативного контроля параметров режимов работы паровых и воздушных стерилизаторов, проводимого в течение цикла стерилизации и по его окончании.

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью средств измерения температуры, давления и времени.

Результаты контроля позволяют оперативно выявить неисправность аппарата и контрольно-измерительных приборов и ориентировочно оценить правильность загрузки стерилизаторов в каждом конкретном случае.

Химический метод контроля работы стерилизаторов осуществляется с помощью химических тестов и термохимических индикаторов.

Химический тест представляет собой запаянную с обоих концов стеклянную трубку, заполненную смесью химического соединения с органическим красителем или только химическим веществом, изменяющим свое агрегатное состояние и цвет при достижении определенной для него температуры плавления.

Термохимический индикатор представляет собой полоску бумаги, на которую нанесена термоиндикаторная краска. Определение параметров, достигнутых в процессе стерилизации, основано на изменении цвета термоиндикаторной краски при достижении «температуры перехода», строго определенной для каждой краски (см. табл. 7, 8, 9).

При проведении планового контроля и контроля по показаниям контрольные тесты (максимальные термометры, химические тесты и термохимические индикаторы, биотесты – споро-тест-культуры) упаковывают вместе в упаковочную бумагу, нумеруют и размещают по схеме в контрольные точки паровых и воздушных стерилизаторов.

При осуществлении самоконтроля работы стерилизаторов персонал, обслуживающий стерилизаторы, закладывает максимальные термометры, химические тесты и термохимические индикаторы в стерилизационную, следит на протяжении цикла стерилизации за показаниями контрольно-измерительных приборов, оценивает результаты контроля и дает заключение о возможности выдачи простерилизованных изделий. Результаты физического и химического контроля регистрируются в журнале, пронумерованном, прошнурованном и скрепленном печатью ЛПУ (форма 257/у).

Медицинский персонал, осуществляющий стерилизацию, закладывает химические тесты и термохимические индикаторы в стерилизационные коробки или внутрь стерилизуемых упаковок, оценивает результаты контроля и принимает решение о возможности использования простерилизованных изделий.

Расположение контрольных точек в паровых стерилизаторахВ вертикальных круглых стерилизаторах объемом камеры до 100 дм ³необходимо 5 контрольных точек:

1) в верхней части камеры;

2) в нижней части камеры;

3) 3, 4 и 5-ю точки необходимо расположить в центре стерилиза-ционных коробок или внутри стерилизуемых упаковок, размещенных на разных уровнях.

В круглых горизонтальных стерилизаторах объемом до 750 дм ³:

1) первая точка у загрузочной двери;

2) вторая – у противоположной стенки;

3) 3, 4 и 5-я точки – в центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых упаковок.

Для круглых горизонтальных и прямоугольных стерилизаторов необходимо 11 точек:

1) у загрузочной двери;

2) у противоположной стенки;

3) с 3 по 11-ю точки в центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых упаковок.

Для прямоугольных стерилизаторов объемом более 750 дм ³необходимо 13 точек:

1) первая – у загрузочной двери;

2) вторая – у противоположной стенки рядом с разгрузочной дверью;

3) с 3-й по 13-ю точки – в центре стерилизационных коробок или внутри стерилизуемых упаковок, размещенных на разных уровнях.

Вне зависимости от вида стерилизатора первая и вторая контрольные точки находятся в камере вне упаковки изделий.

Если после стерилизации получены неудовлетворительные результаты, то она не считается пройденной, аппарат проверяется на наличие неполадок.

Расположение контрольных точек

в воздушных стерилизаторах

В аппаратах объемом камеры до 80 дм ³5 точек:

1) первая – в центре стерилизационной камеры;

2) 3 и 4-я точки – в нижней части стерилизационной камеры на одинаковом удалении от двери и задней стенки;

3) 2 и 5-я точки – в нижней части камеры.

В однокамерных аппаратах объемом камеры более 80 дм ³15 точек:

1) 1-3-я точки – в центре стерилизационной камеры на трех уровнях сверху вниз;

2) 4-15-я точки – по углам на трех уровнях (снизу, сверху и посередине).

В двухкамерных аппаратах объемом камеры более 80 дм ³30 точек (по 15 в каждой камере) (см. однокамерные).

Контрольные тесты должны располагаться на расстоянии не ближе 5 см от стенок стерилизационной камеры.